论文目录 | |
| 摘要 | 第1-7页 |
| ABSTRACT | 第7-17页 |
| 1. 引言和文献综 | 第17-56页 |
| 1.1 沙门氏菌 | 第17-21页 |
| 1.1.1 沙门氏菌的介绍 | 第17-21页 |
| 1.1.2 沙门氏菌的致病机理 | 第21页 |
| 1.2 沙门氏菌的检测方法的研究现状及进展 | 第21-29页 |
| 1.2.1 传统的检测方法 | 第22页 |
| 1.2.2 以免疫学为基础的检测技术 | 第22-23页 |
| 1.2.3 以分子生物学为基础的检测技术 | 第23-27页 |
| 1.2.4 以生物传感器为基础的检测方法 | 第27-29页 |
| 1.3 核酸适配体(APTAMER) | 第29-39页 |
| 1.3.1 适配体的体外筛选 | 第29-33页 |
| 1.3.2 适配体与靶标分子的结合原理 | 第33页 |
| 1.3.3 适配体的优势 | 第33-35页 |
| 1.3.4 适配体的应用 | 第35-39页 |
| 1.4 碳纳米材料及其功能简介 | 第39-47页 |
| 1.4.1 碳纳米管 | 第39-45页 |
| 1.4.2 石墨烯 | 第45-47页 |
| 1.5 细菌生物膜 | 第47-53页 |
| 1.5.1 细菌生物膜的组成及特点 | 第47-48页 |
| 1.5.2 细菌生物膜的形成过程 | 第48-50页 |
| 1.5.3 细菌生物膜的致病机制 | 第50-51页 |
| 1.5.4 细菌生物膜的治疗现状 | 第51-53页 |
| 1.6 本课题的研究内容 | 第53-56页 |
| 2. 基于碳纳米管的二次猝灭效应检测含有SSEC基因的鼠伤寒沙门氏菌的研究 | 第56-69页 |
| 2.1 引言 | 第56-58页 |
| 2.2 实验部分 | 第58-61页 |
| 2.2.1 实验仪器与材料 | 第58-59页 |
| 2.2.2 实验溶液及培养基配置 | 第59页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第59-61页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第61-67页 |
| 2.3.1 分子信标与碳纳米管羧基的最佳比例及复合物表征 | 第61-63页 |
| 2.3.2 碳纳米管的二次猝灭效应 | 第63-64页 |
| 2.3.3 靶标DNA检测及错配实验 | 第64-66页 |
| 2.3.4 鼠伤寒沙门氏菌样品的灵敏性和特异性检测 | 第66-67页 |
| 2.4 小结 | 第67-69页 |
| 3. 基于碳纳米管和核酸适配体技术对甲型副伤寒沙门氏菌的双重信号检测研究 | 第69-96页 |
| 3.1 引言 | 第69-70页 |
| 3.2 实验部分 | 第70-82页 |
| 3.2.1 实验仪器与材料 | 第70-71页 |
| 3.2.2 实验中所用的主要试剂 | 第71-72页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第72-82页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第82-94页 |
| 3.3.1 鞭毛蛋白Native-PAGE和SDS-PAGE结果 | 第82-83页 |
| 3.3.2 BSA与吸光度的标准曲线 | 第83-84页 |
| 3.3.3 鞭毛蛋白的SELEX筛选 | 第84-86页 |
| 3.3.4 克隆测序结果、结构分析及亲和力测试 | 第86-88页 |
| 3.3.5 适配体定量检测甲型副伤寒沙门氏菌 | 第88页 |
| 3.3.6 适配体对甲型副伤寒的特异性检测结果 | 第88-89页 |
| 3.3.7 激光共聚焦显微镜细胞成像分析和鉴定 | 第89-90页 |
| 3.3.8 PO与SWNTs最佳结合比例的探究结果与分析 | 第90-91页 |
| 3.3.9 鞭毛蛋白和牛奶中甲型副伤寒菌体的定量检测 | 第91-93页 |
| 3.3.10 鞭毛蛋白和牛奶中甲型副伤寒菌体的特异性检测 | 第93-94页 |
| 3.4 小结 | 第94-96页 |
| 4. 基于氧化石墨烯与非标记性探针自组装生物传感器对三磷酸腺苷(ATP)的检测 | 第96-109页 |
| 4.1 引言 | 第96-97页 |
| 4.2 实验部分 | 第97-101页 |
| 4.2.1 实验仪器与材料 | 第97-98页 |
| 4.2.2 实验溶液及培养基配置 | 第98页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第98-101页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第101-107页 |
| 4.3.1 体系的设计及机制研究 | 第101-103页 |
| 4.3.2 氧化石墨烯的最佳浓度 | 第103页 |
| 4.3.3 酶切保护实验结果与分析 | 第103-105页 |
| 4.3.4 体系灵敏性检测结果 | 第105页 |
| 4.3.5 体系特异性检测结果 | 第105-106页 |
| 4.3.6 猪霍乱沙门氏菌中ATP的检测结果 | 第106-107页 |
| 4.4 小结 | 第107-109页 |
| 5. 适配体控制猪霍乱沙门氏菌菌膜形成的研究 | 第109-132页 |
| 5.1 引言 | 第109-111页 |
| 5.2 实验部分 | 第111-120页 |
| 5.2.1 实验仪器与材料 | 第111-112页 |
| 5.2.2 实验中所用的主要试剂 | 第112-113页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第113-120页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第120-131页 |
| 5.3.1 猪霍乱沙门氏菌菌体的SELEX筛选 | 第120-122页 |
| 5.3.2 适配体结构分析及亲和力测试 | 第122-123页 |
| 5.3.3 适配体对靶标的灵敏性鉴定结果 | 第123-124页 |
| 5.3.4 适配体对靶标的特异性鉴定结果 | 第124-125页 |
| 5.3.5 表面标记分子垂钓结果 | 第125-126页 |
| 5.3.6 适配体对菌膜的抑制实验结果 | 第126-128页 |
| 5.3.7 菌膜形成的显微镜观察结果 | 第128-130页 |
| 5.3.8 适配体对抗生素的协同作用结果 | 第130-131页 |
| 5.4 小结 | 第131-132页 |
| 6. 结论与展望 | 第132-135页 |
| 6.1 实验结论 | 第132-133页 |
| 6.2 实验展望 | 第133-135页 |
| 参考文献 | 第135-161页 |
| 攻读博士学位期间撰写、发表的学术论文 | 第161-163页 |
| 致谢 | 第163-167页 |
| 附录 | 第167-168页 |
