论文目录 | |
摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-16页 |
第一章 绪论 | 第16-40页 |
1.1 水体重金属镉污染 | 第16-19页 |
1.1.1 水体镉污染危害与来源 | 第16-17页 |
1.1.2 镉在水体中的迁移转化 | 第17-19页 |
1.2 水体镉污染治理方法 | 第19-21页 |
1.2.1 物理化学法 | 第19-20页 |
1.2.2 生物法 | 第20-21页 |
1.3 生物吸附 | 第21-31页 |
1.3.1 生物吸附剂类型 | 第21-24页 |
1.3.2 生物吸附影响因素 | 第24-27页 |
1.3.3 生物吸附平衡模型 | 第27-28页 |
1.3.4 生物吸附动力学模型 | 第28-29页 |
1.3.5 活细胞与死细胞生物吸附 | 第29-31页 |
1.4. 生物吸附机理 | 第31-34页 |
1.4.1 细胞表面吸附 | 第31-33页 |
1.4.2 细胞内部积累 | 第33页 |
1.4.3 研究生物吸附机理的现代分析手段 | 第33-34页 |
1.5 微生物对重金属的抗性和解毒机制 | 第34-38页 |
1.5.1 阻止重金属离子内流 | 第34页 |
1.5.2 细胞内部的隔离和解毒作用 | 第34-35页 |
1.5.3 促进重金属离子外流 | 第35-37页 |
1.5.4 重金属的转化作用 | 第37页 |
1.5.5 微生物对 Cd~(2+)吸附和积累的研究概况 | 第37-38页 |
1.6 研究目的与主要研究内容 | 第38-40页 |
1.6.1 研究目的和意义 | 第38页 |
1.6.2 主要研究内容 | 第38-40页 |
第二章 大宝山矿区水体重金属污染分布特征与评价 | 第40-55页 |
2.1 试验与分析方法 | 第40-42页 |
2.1.1 研究区域概括 | 第40页 |
2.1.2 采样点布设 | 第40-41页 |
2.1.3 样品的采集与预处理 | 第41-42页 |
2.1.4 样品分析 | 第42页 |
2.2. 结果与讨论 | 第42-54页 |
2.2.1 水质参数变化 | 第42-43页 |
2.2.2 水体中重金属污染特征 | 第43-47页 |
2.2.3 悬浮物中重金属污染特征 | 第47-49页 |
2.2.4 沉积物中重金属污染特征 | 第49-51页 |
2.2.5 沉积物中重金属污染评价 | 第51-54页 |
2.3 本章小结 | 第54-55页 |
第三章 B.cereus RC-1 对 Cd~(2+)的耐受性与抗性机制初探 | 第55-67页 |
3.1 试验材料与方法 | 第55-59页 |
3.1.1 试验材料 | 第55-56页 |
3.1.2 试验仪器 | 第56页 |
3.1.3 耐镉细菌的 16S rDNA 基因序列分析 | 第56页 |
3.1.4 不同初始 Cd~(2+)浓度对 B.cereus RC-1 生长的影响 | 第56-57页 |
3.1.5 不同初始 Cd~(2+)浓度下 B.cereus RC-1 生长曲线 | 第57页 |
3.1.6 B.cereus RC-1 最小抑菌浓度(MIC)的测定 | 第57页 |
3.1.7 质粒消除试验 | 第57页 |
3.1.8 质粒提取试验 | 第57-58页 |
3.1.9 琼脂糖核酸电泳 | 第58-59页 |
3.2 结果与讨论 | 第59-66页 |
3.2.1 耐镉菌株的生物学特性 | 第59-61页 |
3.2.2 不同初始 Cd~(2+)浓度对 B.cereus RC-1 生长的影响 | 第61-62页 |
3.2.3 不同初始 Cd~(2+)浓度下 B.cereus RC-1 生长曲线 | 第62-63页 |
3.2.4. B.cereus RC-1 最小抑菌浓度(MIC) | 第63-64页 |
3.2.5 质粒提取与检测 | 第64-66页 |
3.3 本章小结 | 第66-67页 |
第四章 生长菌株 B.cereus RC-1 对 Cd~(2+)吸附及动力学研究 | 第67-78页 |
4.1 试验材料与方法 | 第67-69页 |
4.1.1 试验菌种、培养基和主要仪器 | 第67页 |
4.1.2 生长菌株 B. cereus RC-1 吸附 Cd~(2+)的影响因素 | 第67页 |
4.1.3 生长菌株 B. cereus RC-1 等温吸附试验 | 第67-68页 |
4.1.4 生长菌株 B. cereus RC-1 吸附动力学试验 | 第68-69页 |
4.2 结果与讨论 | 第69-76页 |
4.2.1 生长菌株 B.cereus RC-1 吸附影响因素 | 第69-70页 |
4.2.2 初始 Cd~(2+)浓度对吸附影响与吸附等温线 | 第70-73页 |
4.2.3 吸附时间对吸附的影响与吸附动力学 | 第73-76页 |
4.3 本章小结 | 第76-78页 |
第五章 菌株 B.cereus RC-1 活死细胞对 Cd~(2+)吸附特性与机理研究 | 第78-104页 |
5.1 试验材料与方法 | 第78-82页 |
5.1.1 试验材料与仪器 | 第78-79页 |
5.1.2 菌株 B. cereus RC-1 活死细胞吸附剂的制备 | 第79页 |
5.1.3 影响 B. cereus RC-1 活死细胞吸附 Cd~(2+)的条件 | 第79-80页 |
5.1.4 B. cereus RC-1 活死细胞吸附平衡试验 | 第80页 |
5.1.5 B. cereus RC-1 活死细胞吸附动力学试验 | 第80页 |
5.1.6 菌体活死细胞吸附 Cd~(2+)的 Zeta 测定 | 第80页 |
5.1.7 菌体活死细胞吸附 Cd~(2+)的 SEM-EDS 分析 | 第80-81页 |
5.1.8 菌体活细胞吸附 Cd~(2+)的 TEM 观察 | 第81页 |
5.1.9 菌体活死细胞吸附 Cd~(2+)的 FTIR 分析 | 第81页 |
5.1.10 菌体活死细胞吸附 Cd~(2+)的解吸试验 | 第81页 |
5.1.11 活性菌体 B.cereus RC-1 的胞外吸附与胞内积累 | 第81-82页 |
5.2. 结果与讨论 | 第82-103页 |
5.2.1 B.cereus RC-1 活死细胞对 Cd~(2+)吸附影响因素 | 第82-85页 |
5.2.2 B.cereus RC-1 活死细胞对 Cd~(2+)吸附等温线的拟合 | 第85-88页 |
5.2.3 B.cereus RC-1 活死细胞对 Cd~(2+)吸附动力学研究 | 第88-91页 |
5.2.4 B.cereus RC-1 活死细胞对 Cd~(2+)吸附机理研究 | 第91-102页 |
5.2.5 菌体 B.cereus RC-1 的胞外吸附与胞内积累 | 第102-103页 |
5.3 本章小结 | 第103-104页 |
第六章 生长菌株 B.cereus RC-1 对 Cd~(2+)的吸附机理研究 | 第104-126页 |
6.1 试验材料与方法 | 第105-106页 |
6.1.1 试验材料和主要仪器 | 第105页 |
6.1.2 不同 Cd~(2+)浓度下溶液 pH 的变化 | 第105页 |
6.1.3 不同 Cd~(2+)浓度下菌体表面 Zeta 的变化 | 第105页 |
6.1.4 不同 Cd~(2+)浓度下菌体 SEM-EDS 分析 | 第105页 |
6.1.5 不同 Cd~(2+)浓度下菌体透射电镜 TEM 观察 | 第105页 |
6.1.6 不同 Cd~(2+)浓度下菌体原子力显微镜 AFM 观察 | 第105页 |
6.1.7 不同 Cd~(2+)浓度下菌体红外光谱 FTIR 分析 | 第105页 |
6.1.8 生长菌株 B.cereus RC-1 对 Cd~(2+)的胞内积累 | 第105-106页 |
6.1.9 代谢抑制剂对生长菌株的吸附影响 | 第106页 |
6.2 结果与讨论 | 第106-125页 |
6.2.1 不同 Cd~(2+)浓度下溶液 pH 的变化 | 第106-107页 |
6.2.2 不同 Cd~(2+)浓度下菌体表面 Zeta 电位分析 | 第107-108页 |
6.2.3 不同 Cd~(2+)浓度下菌体 SEM-EDS 分析 | 第108-111页 |
6.2.4 不同 Cd~(2+)浓度下菌体微观形貌 TEM 观察分析 | 第111-112页 |
6.2.5 不同 Cd~(2+)浓度下菌体微观形貌 AFM 观察分析 | 第112-116页 |
6.2.6 不同 Cd~(2+)浓度下菌体 FTIR 分析 | 第116-117页 |
6.2.7 生长菌株 B.cereus RC-1 对 Cd~(2+)胞外吸附和胞内累积 | 第117-120页 |
6.2.8 不同生长时期细胞对 Cd~(2+)的吸附和累积 | 第120-123页 |
6.2.9 代谢抑制剂(DCC)对不同生长时期细胞吸附 Cd~(2+)的影响 | 第123-125页 |
6.3 本章小结 | 第125-126页 |
结论与展望 | 第126-129页 |
1 研究结论 | 第126-127页 |
2 研究特色与创新点 | 第127-128页 |
3 研究展望 | 第128-129页 |
参考文献 | 第129-147页 |
攻读博士学位期间取得的研究成果 | 第147-149页 |
致谢 | 第149-151页 |
附件 | 第151页 |