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苹果葡萄糖感受器MdHXK1磷酸化Na~+/H~+交换蛋白MdNHX1调控耐盐性的分子机理

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苹果葡萄糖感受器MdHXK1磷酸化Na~+/H~+交换蛋白MdNHX1调控耐盐性的分子机理
论文目录
 
符号说明第1-12页
中文摘要第12-14页
英文摘要第14-16页
1 前言第16-37页
  1.1 土壤盐渍化及其危害第16-17页
  1.2 植物耐盐机制第17-23页
    1.2.1 积累渗透调节物第17页
    1.2.2 活性氧清除机制第17-18页
    1.2.3 离子平衡第18-19页
    1.2.4 SOS(Salt-Overly-Sensitive)途径第19-21页
    1.2.5 Na~+/H~+交换蛋白与植物耐盐性第21-23页
      1.2.5.1 Na~+/H~+交换蛋白(NHX)的分类第21-22页
      1.2.5.2 Na~+/H~+交换蛋白的生化功能和调控第22-23页
  1.3 植物中的糖感知与糖信号第23-35页
    1.3.1 植物中的糖信号的产生第24-26页
    1.3.2 植物中的糖感知机制第26-31页
      1.3.2.1 葡萄糖感受器HXK第27-29页
      1.3.2.2 二糖的感知第29-30页
      1.3.2.3 细胞表面受体与糖信号第30-31页
    1.3.3 植物中的糖信号转导第31-33页
      1.3.3.1 转录调控第31-32页
      1.3.3.2 蛋白激酶和蛋白磷酸酶在糖信号转导中的作用第32-33页
    1.3.4 糖信号与植物激素第33-35页
      1.3.4.1 糖信号与ABA信号第33-35页
      1.3.4.2 糖信号与乙烯信号第35页
  1.4 研究的目的与意义第35-37页
2 材料与方法第37-66页
  2.1 试验材料第37-41页
    2.1.1 苹果材料第37页
    2.1.2 拟南芥及其生长条件第37页
    2.1.3 酵母及其生长条件第37页
    2.1.4 菌株第37-38页
    2.1.5 载体第38页
    2.1.6 引物第38页
    2.1.7 所用药品试剂第38-39页
    2.1.8 培养基第39-41页
    2.1.9 缓冲液配方第41页
  2.2 试验方法第41-66页
    2.2.1 植物总RNA的提取第41-42页
    2.2.2 RNA含量与纯度检测第42页
    2.2.3 基因组DNA的去除第42-43页
    2.2.4 基因的克隆第43页
    2.2.5 PCR产物回收第43-44页
    2.2.6 连接反应第44页
    2.2.7 大肠杆菌感受态的制备和转化第44-45页
    2.2.8 测序第45页
    2.2.9 质粒DNA的提取第45-46页
    2.2.10 质粒DNA的酶切反应第46页
    2.2.11 表达载体的构建第46-49页
      2.2.11.1 MdHXK1、MdNHX1过量表达载体的构建第46-47页
      2.2.11.2 MdHXK1、MdNHX1瞬时沉默表达载体的构建第47页
      2.2.11.3 用于发根农杆菌侵染的pK7GWIWG2载体构建第47-48页
      2.2.11.4 启动子载体构建第48页
      2.2.11.5 原核表达载体的构建第48-49页
      2.2.11.6 酵母双杂交载体构建第49页
    2.2.12 农杆菌感受态细胞的制备与转化第49-50页
    2.2.13 植物材料的准备及转化第50-52页
      2.2.13.1 苹果王林愈伤组织的培养第50页
      2.2.13.2 苹果愈伤组织的转化第50页
      2.2.13.3 ‘Gala’苹果遗传转化第50-51页
      2.2.13.4 发根农杆菌MSU440侵染第51-52页
    2.2.14 酵母双杂第52-53页
      2.2.14.1 所用相关试剂及配制方法第52页
      2.2.14.2 酵母双杂交步骤第52-53页
    2.2.15 蛋白相关的试验技术第53-56页
      2.2.15.1 原核诱导蛋白第53-54页
      2.2.15.2 原核诱导蛋白纯化第54-55页
      2.2.15.3 Pull-Down第55页
      2.2.15.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)第55-56页
    2.2.16 植物总蛋白的提取第56页
    2.2.17 蛋白免疫印迹分析(Westernblotting)第56-57页
      2.2.17.1 转膜第56-57页
      2.2.17.2 洗膜和显影第57页
    2.2.18 蛋白体外降解第57-58页
    2.2.19 Co-IP免疫共沉淀第58-59页
    2.2.20 蛋白磷酸化检测第59-60页
      2.2.20.1 离体蛋白磷酸化的鉴定(放射性32P同位素标记)第59页
      2.2.20.2 体内蛋白磷酸化的检测(Pro-QDiamondPhosphoproteinGelStain)第59-60页
    2.2.21 苹果原生质体的提取第60-62页
      2.2.21.1 原生质体的分离第60页
      2.2.21.2 PEG转化第60-62页
    2.2.22 Na~+/H~+交换活性检测第62-63页
      2.2.22.1 液泡膜蛋白的提取第62页
      2.2.22.2 测定Na~+/H~+交换活性第62-63页
    2.2.23 酵母突变体互补试验第63页
    2.2.24 脯氨酸含量测定第63-64页
      2.2.24.1 脯氨酸的提取第63页
      2.2.24.2 脯氨酸标准曲线第63-64页
    2.2.25 MDA含量测定第64页
    2.2.26 Na~+、K+离子含量测定第64-66页
3 结果与分析第66-93页
  3.1 外源葡萄糖提高苹果苗的耐盐性第66-68页
    3.1.1 外源葡萄糖提高苹果苗的耐盐性第66-67页
    3.1.2 葡萄糖提高苹果苗耐盐性依赖于HXK第67-68页
  3.2 葡萄糖通过MdHXK1提高苹果耐盐性第68-71页
    3.2.1 MdHXK1在转录水平和蛋白水平均受盐胁迫的诱导第68-69页
    3.2.2 反义抑制MdHXK1的表达降低苹果叶片的耐盐性第69-70页
    3.2.3 MdHXK1主要依赖其信号途径提高耐盐性第70-71页
  3.3 MdHXK1与MdNHX1互作第71-74页
    3.3.1 MdHXK1互作蛋白的筛选第71-72页
    3.3.2 MdHXK1与MdNHX1互作验证第72-74页
  3.4 MdNHX1的功能鉴定第74-80页
    3.4.1 MdNHX1基因的分子克隆第74-75页
    3.4.2 酵母突变体互补验证Na~+/H~+交换蛋白MdNHX1的功能第75页
    3.4.3 MdNHX1的亚细胞定位第75-76页
    3.4.4 MdNHX1基因的表达模式分析第76-77页
    3.4.5 过表达MdNHX1提高苹果愈伤的耐盐性第77-78页
    3.4.6 MdNHX1过表达苹果愈伤中的Na~+/H~+交换活性提高第78-79页
    3.4.7 异源表达MdNHX1提高拟南芥的耐盐性第79-80页
  3.5 MdHXK1在275位的丝氨酸磷酸化MdNHX1蛋白第80-83页
  3.6 MdHXK1影响MdNHX1的蛋白稳定性和转运活性第83-86页
    3.6.1 MdHXK1提高MdNHX1的蛋白稳定性第83-84页
    3.6.2 MdHXK1提高MdNHX1的转运活性第84-85页
    3.6.3 共转MdHXK1与MdNHX1提高酵母突变体的耐盐性第85-86页
  3.7 MdHXK1提高植物耐盐性部分依赖于MdNHX第86-93页
    3.7.1 MdHXK1提高苹果愈伤耐盐性第86-87页
    3.7.2 过表达MdHXK1提高苹果植株的耐盐性第87-89页
    3.7.3 MdHXK1提高苹果苗的耐盐性部分依赖MdNHX第89-91页
    3.7.4 反义抑制MdNHX1的表达增加了MdHXK1过表达植株叶片对盐的敏感性第91-93页
4 讨论第93-99页
  4.1 葡萄糖信号通过HXK依赖途径提高耐盐性第93-95页
  4.2 MdHXK1部分通过MdNHX1参与植物耐盐性第95-97页
  4.3 MdNHX1在维持盐胁迫下细胞内离子稳态过程中起重要作用第97-99页
5 结论第99-100页
6 参考文献第100-119页
7 附录第119-123页
8 致谢第123-124页
9 攻读学位期间发表论文情况第124页

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