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一氧化氮信号转导参与亚精胺调控白三叶抗旱性机制研究

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一氧化氮信号转导参与亚精胺调控白三叶抗旱性机制研究
论文目录
 
摘要第1-6页
Abstract第6-11页
第一章 文献综述第11-23页
  · 植物抗旱机理第11-17页
    · 干旱对植物的危害第11-12页
    · 植物形态结构的改变对干旱的响应第12-13页
    · 生理代谢与抗旱性第13-15页
    · 植物抗旱分子机制第15-17页
  · 多胺与植物抗旱性第17-22页
    · 清除活性氧自由基,促进抗氧化保护第18-19页
    · 诱导内源激素产生第19页
    · 促进渗透调节第19-20页
    · 提高碳代谢,促进光合作用第20页
    · 诱导NO信号转导第20-22页
  · 研究目的与意义第22-23页
第二章 外源亚精胺提高白三叶抗旱性第23-33页
  · 试验材料第23页
  · 试验设计与处理第23-24页
    · 干旱胁迫下白三叶种子萌发试验第23页
    · 幼苗抗旱试验第23-24页
  · 测定指标与方法第24-27页
    · 种子萌发相关指标测定与方法第24页
    · 幼苗抗旱生理指标测定与方法第24-27页
  · 结果与分析第27-30页
    · 外源Spd浸种对干旱胁迫下白三叶种子萌发的影响第27-28页
    · 外源Spd对白三叶幼苗抗旱性的影响第28-30页
  · 讨论第30-33页
    · 外源Spd浸种提高干旱胁迫下白三叶种子萌发特性第30-31页
    · 外源Spd提高白三叶幼苗抗旱性效应第31-33页
第三章 NO信号转导参与Spd提高白三叶抗旱性第33-43页
  · 试验材料第33页
  · 试验设计与处理第33-34页
    · 白三叶培育第33页
    · 试验处理第33-34页
  · 测定指标与方法第34-36页
    · NO荧光检测第34-35页
    · 一氧化氮合酶活性(NOS)测定第35页
    · 硝酸还原酶活性(NR)测定第35页
    · 抗氧化酶活性测定第35页
    · 荧光实时定量PCR (qRT-PCR)分析第35-36页
  · 结果与分析第36-41页
    · 正常条件下外源Spd处理对白三叶叶片NO产生的影响第36页
    · Spd对干旱胁迫下白三叶叶片NO产生的影响第36-37页
    · Spd对干旱胁迫下硝酸还原酶活性的影响第37页
    · Spd对干旱胁迫下一氧化氮合酶活性的影响第37-38页
    · Spd和NO合成抑制剂对干旱胁迫下白三叶抗氧化酶活性及其基因相对表达的影响第38-40页
    · NO对Spd诱导白三叶抗氧化酶活性及其基因相对表达的影响第40-41页
  · 讨论第41-43页
    · Spd参与干旱诱导NO的产生第41-42页
    · 干旱胁迫下Spd诱导NO的产生与NR和NOS途径密切相关第42页
    · Spd诱导NO参与干旱诱导的抗氧化酶活性及基因表达第42-43页
第四章 外源NO提高白三叶抗旱性第43-50页
  · 试验材料第43页
  · 试验设计与处理第43-44页
    · SNP最适浓度选择第43页
    · 外源根施SNP提高白三叶抗旱性试验第43-44页
  · 测定指标与方法第44页
    · 叶片相对含水量(RWC)测定第44页
    · 电解质渗透率(EL)测定第44页
    · 丙二醛(MDA)含量测定第44页
    · 抗氧化酶活性测定第44页
  · 结果与分析第44-48页
    · 提高白三叶抗旱性的NO供体SNP浓度筛选第44-45页
    · 外源SNP对干旱胁迫下白三叶叶片RWC的影响第45-46页
    · 外源SNP对干旱胁迫下白三叶电解质渗漏率及MDA含量的影响第46-47页
    · 外源SNP对干旱胁迫下白三叶叶片抗氧化酶活性的影响第47-48页
  · 讨论第48-50页
    · SNP提高白三叶抗旱性的适宜浓度第48-49页
    · 外源SNP提高白三叶抗旱性效应第49-50页
第五章 全文总结第50-52页
  · 结论第50页
  · 下一步研究计划第50-52页
参考文献第52-61页
在读期间发表论文情况第61-62页
致谢第62-63页
附录第63-64页

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