论文目录 | |
摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-11页 |
第一章 绪论 | 第11-17页 |
1.1 南美白对虾 | 第11页 |
1.2 虾肉肌肉蛋白质的冷冻变性 | 第11-12页 |
1.3 添加剂在虾类保鲜中的应用 | 第12-13页 |
1.4 水分活度保藏理论 | 第13-14页 |
1.4.1 水分活度保藏理论 | 第13-14页 |
1.4.2 水分活度保藏理论的不足 | 第14页 |
1.5 玻璃化转变理论 | 第14-16页 |
1.5.1 玻璃化转变理论 | 第14-15页 |
1.5.2 水分活度保藏理论与玻璃化转变理论的应用 | 第15-16页 |
1.6 本课题的立题背景与意义 | 第16页 |
1.7 本课题的主要研究内容 | 第16-17页 |
第二章 添加剂对南美白对虾冻藏期间蛋白质生化特性的影响 | 第17-29页 |
2.1 引言 | 第17页 |
2.2 实验材料 | 第17-18页 |
2.2.1 材料与试剂 | 第17-18页 |
2.2.2 仪器与设备 | 第18页 |
2.3 试验方法 | 第18-22页 |
2.3.1 样品处理 | 第18页 |
2.3.2 肌原纤维蛋白的提取 | 第18-19页 |
2.3.3 Ca~(2+)-ATPase活性测定 | 第19-21页 |
2.3.4 盐溶性蛋白含量测定 | 第21页 |
2.3.5 活性巯基含量测定 | 第21页 |
2.3.6 表面疏水性测定 | 第21-22页 |
2.3.7 统计分析 | 第22页 |
2.4 结果与讨论 | 第22-28页 |
2.4.1 Ca~(2+)-ATPase活性的变化 | 第22-24页 |
2.4.2 盐溶性蛋白含量的变化 | 第24-25页 |
2.4.3 活性巯基含量的变化 | 第25-26页 |
2.4.4 表面疏水性的变化 | 第26-28页 |
2.5 本章小结 | 第28-29页 |
第三章 不同贮藏条件对南美白对虾蛋白质变性的影响 | 第29-41页 |
3.1 引言 | 第29页 |
3.2 实验材料 | 第29-30页 |
3.2.1 材料与试剂 | 第29页 |
3.2.2 仪器与设备 | 第29-30页 |
3.3 试验方法 | 第30-32页 |
3.3.1 样品准备 | 第30页 |
3.3.2 肌原纤维蛋白的提取 | 第30页 |
3.3.3 Ca~(2+)-ATPase活性测定 | 第30-31页 |
3.3.4 Ca~(2+)-ATPase活性值测定的时间方案设计 | 第31-32页 |
3.3.5 统计分析 | 第32页 |
3.4 结果与讨论 | 第32-39页 |
3.4.1 鲜虾蛋白质变性分析 | 第32-34页 |
3.4.2 单分子层含水率以上虾肉蛋白质变性分析 | 第34-37页 |
3.4.3 单分子层含水率以下虾肉蛋白质变性分析 | 第37-39页 |
3.5 本章小结 | 第39-41页 |
第四章 南美白对虾肉贮藏期间品质变化机制 | 第41-50页 |
4.1 引言 | 第41页 |
4.2 实验材料 | 第41页 |
4.2.1 材料与试剂 | 第41页 |
4.2.2 仪器与设备 | 第41页 |
4.3 试验方法 | 第41-43页 |
4.3.1 样品准备 | 第41页 |
4.3.2 肌原纤维蛋白的提取 | 第41-42页 |
4.3.3 Ca~(2+)-ATPase活性测定 | 第42页 |
4.3.4 Ca~(2+)-ATPase活性值测定的时间方案设计 | 第42页 |
4.3.5 玻璃化转变温度T_g的确定 | 第42页 |
4.3.6 Ca~(2+)-ATPase活性反应动力学模型 | 第42-43页 |
4.3.7 统计分析 | 第43页 |
4.4 结果与讨论 | 第43-49页 |
4.4.1 样品的玻璃化转变温度T_g | 第43-44页 |
4.4.2 Ca~(2+)-ATPase活性模型拟合结果 | 第44-45页 |
4.4.3 样品PV与PV-MD的T-T_g与反应速率常数k的关系 | 第45-47页 |
4.4.4 样品PV和PV-MD的X_w/X_b与反应速率常数k的关系 | 第47-49页 |
4.5 本章小结 | 第49-50页 |
第五章 结论与展望 | 第50-51页 |
5.1 结论 | 第50页 |
5.2 展望 | 第50-51页 |
参考文献 | 第51-57页 |
在读期间公开发表的论文 | 第57-58页 |
致谢 | 第58页 |