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A型口蹄疫病毒黏膜特异性sIgA抗体ELISA检测方法的建立与应用

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A型口蹄疫病毒黏膜特异性sIgA抗体ELISA检测方法的建立与应用
论文目录
 
摘要第1-7页
abstract第7-12页
第一章 前言第12-18页
  1.1 口蹄疫概述第12-13页
  1.2 黏膜免疫概述第13-14页
  1.3 sIgA与黏膜免疫第14-16页
    1.3.1 sIgA的结构与分类第14页
    1.3.2 sIgA的生物学功能第14-15页
    1.3.3 sIgA抗体检测的意义第15-16页
  1.4 ELISA检测方法的介绍第16页
  1.5 本研究的目的与意义第16-18页
第二章 A型FMDV VP1基因在大肠杆菌BL21(DE3)中的表达及鉴定第18-29页
  2.1 材料第18-20页
    2.1.1 病毒和质粒第18页
    2.1.2 主要试剂第18页
    2.1.3 主要培养基和试剂的配制第18-19页
    2.1.4 主要设备第19-20页
  2.2 方法第20-25页
    2.2.1 引物的设计与合成第20页
    2.2.2 重组表达质粒的构建第20-22页
    2.2.3 重组表达质粒的鉴定第22-23页
    2.2.4 重组质粒的诱导表达及鉴定第23-24页
    2.2.5 VP1蛋白的大量表达与纯化第24-25页
  2.3 结果与分析第25-28页
    2.3.1 重组表达质粒的PCR和酶切鉴定结果第25-26页
    2.3.2 重组大肠杆菌的表达与鉴定结果第26-27页
    2.3.3 VP1蛋白的大量表达与纯化结果第27-28页
  2.4 讨论第28-29页
第三章 FMDV黏膜特异性sIgA抗体ELISA检测方法的建立第29-41页
  3.1 材料第29页
    3.1.1 主要试剂第29页
    3.1.2 主要设备第29页
  3.2 实验方法第29-31页
    3.2.1 ELISA操作程序第29页
    3.2.2 抗原最佳包被浓度及最佳包被抗原的选择第29-30页
    3.2.3 最佳封闭液的选择第30页
    3.2.4 二抗和三抗最佳稀释度的确定第30页
    3.2.5 样品孵育时间的确定第30页
    3.2.6 二抗和三抗作用时间的确定第30页
    3.2.7 底物作用时间第30页
    3.2.8 sIgA-ELISA的阴阳性临界值的确定第30-31页
    3.2.9 sIgA-ELISA的重复性试验第31页
    3.2.10 sIgA-ELISA的敏感性和特异性试验第31页
  3.3 结果与分析第31-39页
    3.3.1 包被蛋白浓度的确定第31-32页
    3.3.2 最佳封闭液的确定第32-33页
    3.3.3 二抗和三抗最佳稀释度和作用时间的确定第33-34页
    3.3.4 样品最佳反应时间的选择第34-35页
    3.3.5 鼠抗猪IgA单抗作用时间的确定第35-36页
    3.3.6 HRP标记的羊抗鼠IgG抗体作用时间的确定第36-37页
    3.3.7 底物作用时间的确定第37-38页
    3.3.8 sIgA-ELISA的重复性试验结果第38页
    3.3.9 sIgA-ELISA的阴阳性临界值的确定第38-39页
    3.3.10 sIgA-ELISA的特异性和敏感性试验结果第39页
  3.4 讨论第39-41页
第四章 FMDV黏膜特异性sIgA抗体ELISA检测方法的应用第41-49页
  4.1 材料第41页
    4.1.1 毒株和动物第41页
    4.1.2 主要试剂第41页
    4.1.3 主要仪器第41页
  4.2 实验内容第41-43页
    4.2.1 动物实验分组第41-42页
    4.2.2 样品的采集第42页
    4.2.3 临床样品的检测第42-43页
  4.3 结果与分析第43-47页
    4.3.1 18 头猪鼻拭子中FMDV特异性IgA抗体的统计情况第43-44页
    4.3.2 18 头猪血清中FMDV特异性IgG抗体的统计情况第44-45页
    4.3.3 18 头猪血清中FMDV特异性 3ABC抗体的统计情况第45-46页
    4.3.4 18 头猪鼻拭子中FMDV含量的统计情况第46-47页
  4.4 讨论第47-49页
第五章 全文结论第49-50页
参考文献第50-55页
附录第55-56页
致谢第56-57页
作者简历第57页

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