论文目录 | |
摘要 | 第1-8页 |
abstract | 第8-13页 |
英文缩略表 | 第13-16页 |
第一章 引言 | 第16-24页 |
1.1 植物叶绿体的形态结构与发育过程 | 第16-19页 |
1.1.1 植物叶绿体的形态结构 | 第16-17页 |
1.1.1.1 叶绿体膜(chloroplast envelope) | 第16页 |
1.1.1.2 类囊体(thylakoid) | 第16-17页 |
1.1.1.3 基质(stroma) | 第17页 |
1.1.2 植物叶绿体的发育过程 | 第17-19页 |
1.2 叶绿体基因组及其基因表达调控 | 第19页 |
1.3 研究叶绿体的主要策略 | 第19-21页 |
1.3.1 正向遗传学(forward genetics) | 第20页 |
1.3.2 反向遗传学(reverse genetics) | 第20-21页 |
1.4 叶绿体转录激活复合物(TAC)研究进展 | 第21-23页 |
1.5 本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
第二章 水稻白叶白穗突变体(wlp2)的生理学和细胞形态学分析 | 第24-33页 |
2.1 实验材料 | 第24页 |
2.2 实验方法 | 第24-25页 |
2.2.1 温度梯度实验 | 第24页 |
2.2.2 叶绿素含量测定 | 第24-25页 |
2.2.3 光合指标的测定 | 第25页 |
2.2.4 叶绿素合成速率的测定 | 第25页 |
2.2.5 叶绿体超微结构观察 | 第25页 |
2.3 结果与分析 | 第25-32页 |
2.3.1 突变体的形态学特征 | 第25-29页 |
2.3.2 突变体wlp2与野生型在叶绿体超微结构差异分析 | 第29-30页 |
2.3.3 突变体wlp2与野生型在叶绿素含量、叶绿素合成速率的差异分析 | 第30-31页 |
2.3.4 突变体wlp2与野生型在光合特性与叶绿素荧光动力学的差异分析 | 第31-32页 |
2.4 小结 | 第32-33页 |
第三章 水稻白叶白穗基因(wlp2)的图位克隆 | 第33-44页 |
3.1 材料和方法 | 第33-35页 |
3.1.1 实验材料 | 第33页 |
3.1.2 突变体wlp2-1、wlp2-2 功能互补载体构建 | 第33页 |
3.1.3 农杆菌介导的水稻遗传转化 | 第33-34页 |
3.1.4 基因结构及同源性分析 | 第34页 |
3.1.5 基因表达分析 | 第34页 |
3.1.6 GUS活性的组织化学染色分析 | 第34页 |
3.1.7 WLP2亚细胞定位载体构建以及水稻原生质体转化 | 第34-35页 |
3.1.7.1 WLP2亚细胞定位载体构建 | 第34-35页 |
3.1.7.2 水稻原生质体分离 | 第35页 |
3.1.7.3 原生质体瞬时表达分析 | 第35页 |
3.2 结果与分析 | 第35-43页 |
3.2.1 等位性分析 | 第35-36页 |
3.2.2 图位克隆与转基因验证 | 第36-38页 |
3.2.3 WLP2编码蛋白的生物信息学分析 | 第38-41页 |
3.2.4 WLP2基因表达模式和蛋白亚细胞定位 | 第41-43页 |
3.3 小结 | 第43-44页 |
第四章 水稻白叶白穗基因(wlp2)的功能分析 | 第44-53页 |
4.1 研究材料 | 第44页 |
4.2 研究方法 | 第44-46页 |
4.2.1 酵母双杂交分析 | 第44页 |
4.2.2 双分子荧光互补分析(BiFC) | 第44页 |
4.2.3 数字基因表达谱(DGE)分析 | 第44-45页 |
4.2.4 叶片H_2O_2的沉积检测 | 第45页 |
4.2.5 叶片H_2O_2的含量测定 | 第45-46页 |
4.3 研究结果 | 第46-52页 |
4.3.1 WLP2蛋白互作分析 | 第46-47页 |
4.3.2 WLP2突变后影响质体基因表达 | 第47-49页 |
4.3.3 高温逆害导致突变体白化死亡 | 第49-52页 |
4.4 本章小结 | 第52-53页 |
第五章 全文结论与讨论 | 第53-56页 |
5.1 wlp2是一类高温致死型白叶白穗突变体 | 第53页 |
5.2 WLP2是质体转录激活复合物重要成员 | 第53-54页 |
5.3 WLP2参与叶绿体相关基因的表达调控 | 第54页 |
5.4 wlp2高温致死分子机理探讨 | 第54页 |
5.5 幼苗期高温处理致死突变体wlp2-2 在杂交育种标记中的应用 | 第54-56页 |
参考文献 | 第56-62页 |
附录 | 第62-70页 |
致谢 | 第70-71页 |
作者简历 | 第71页 |