论文目录 | |
致谢 | 第1-10页 |
摘要 | 第10-11页 |
符号及缩略语 | 第11-12页 |
文献综述 | 第12-24页 |
第一章 板蓝根多糖免疫调节作用研究进展 | 第12-16页 |
1 板蓝根多糖的生物学活性 | 第12-14页 |
· 板蓝根多糖的抗菌作用 | 第12-13页 |
· 板蓝根多糖的抗病毒作用 | 第13页 |
· 抗氧化作用 | 第13页 |
· 板蓝根多糖抗炎作用 | 第13页 |
· 板蓝根多糖的其它生物学活性 | 第13-14页 |
2 板蓝根多糖的免疫调节活性 | 第14页 |
3 多糖免疫调节活性机理研究进展 | 第14-16页 |
· 中药多糖受体的研究 | 第14-15页 |
· 多糖对基因表达的影响 | 第15页 |
· 多糖对淋巴细胞信息传导的影响 | 第15-16页 |
第二章 转录因子T-bet、GATA3在免疫调节中的作用以及它们与Th1/Th2平衡的关系 | 第16-24页 |
1 Th1/Th2细胞免疫学功能以及Th1/Th2平衡意义与疾病 | 第16-18页 |
· Th1/Th2细胞免疫学功能 | 第16页 |
· Th1/Th2平衡意义与疾病 | 第16-18页 |
· Th1/Th2平衡与一些慢性病 | 第16-17页 |
· Th1/Th2平衡与自身免疫性疾病 | 第17页 |
· Th1/Th2平衡与肿瘤 | 第17-18页 |
· Th1/Th2平衡与病毒感染 | 第18页 |
· Th1/Th2平衡与免疫耐受 | 第18页 |
2 T-bet、GATA3与Th1/Th2分化 | 第18-22页 |
· T-bet的表达调节 | 第18-19页 |
· GATA3的表达调节 | 第19-20页 |
· T-bet和GATA3与Th1/Th2分化 | 第20-22页 |
· 单一细胞T-bet、GATA3产生过程 | 第20-21页 |
· T-bet与Th1的分化 | 第21页 |
· GATA3与Th2的分化 | 第21-22页 |
· T-bet与GATA3之间的相互作用 | 第22页 |
3 总结 | 第22-24页 |
引言 | 第24-26页 |
试验一 板蓝根多糖最佳剂量的确定 | 第26-30页 |
1 材料与方法 | 第26-27页 |
· 试剂 | 第26页 |
· 仪器 | 第26页 |
· 板蓝根多糖的提取及含量测定 | 第26页 |
· 动物分组与处理 | 第26页 |
· 淋巴细胞增殖实验 | 第26-27页 |
· NK细胞活性检测 | 第27页 |
· OVA抗体水平检测 | 第27页 |
· 10d OVA抗体水平 | 第27页 |
· 30dOVA抗体水平 | 第27页 |
· 数据处理 | 第27页 |
2 结果与分析 | 第27-29页 |
· 不同剂量板蓝根多糖对大鼠淋巴细胞增殖的影响 | 第27-28页 |
· 不同剂量板蓝根多糖对大鼠NK细胞活性的影响 | 第28页 |
· 不同剂量板蓝根多糖对大鼠OVA抗体生成的影响 | 第28-29页 |
3 讨论 | 第29-30页 |
试验二 免疫抑制和免疫亢进大鼠模型的建立 | 第30-38页 |
1 材料与方法 | 第30-31页 |
· 试剂 | 第30页 |
· 仪器 | 第30页 |
· 动物分组与处理 | 第30页 |
· 血液学指标检测 | 第30页 |
· 免疫学指标检测 | 第30-31页 |
· 免疫器官指数的测定 | 第30页 |
· 淋巴细胞转化实验 | 第30页 |
· NK细胞活性检测 | 第30页 |
· OVA抗体检测(ELISA法) | 第30-31页 |
· IL-6 和TNF-a含量的检测(ELISA法) | 第31页 |
· 各组免疫指标综合得分 | 第31页 |
· 数据处理和统计学分析 | 第31页 |
2 结果 | 第31-36页 |
· 不同处理Cy对大鼠免疫器官指数的影响 | 第31-32页 |
· 不同处理Cy对大鼠血液学指标的影响 | 第32页 |
· 不同处理Cy对大鼠淋巴细胞转化的影响 | 第32-33页 |
· 不同处理Cy对大鼠NK细胞活性的影响 | 第33页 |
· 不同处理Cy对大鼠OVA抗体生成的影响 | 第33-34页 |
· 不同处理Cy对大鼠IL-6 生成的影响 | 第34页 |
· 不同处理Cy对大鼠TNF-a生成的影响 | 第34-35页 |
· 各组免疫指标综合得分 | 第35-36页 |
3 讨论 | 第36-38页 |
试验三 板蓝根多糖对不同免疫状态大鼠免疫功能的影响 | 第38-44页 |
1 材料与方法 | 第38-39页 |
· 材料 | 第38页 |
· 实验动物分组与处理 | 第38页 |
· 淋巴细胞增殖实验 | 第38页 |
· NK细胞活性检测 | 第38-39页 |
· OVA抗体水平检测 | 第39页 |
· 数据处理 | 第39页 |
2 结果与分析 | 第39-42页 |
· 免疫第 6d IRPS对不同免疫状态大鼠T淋巴细胞和B淋巴细胞增殖的影响 | 第39页 |
· 免疫第 6d IRPS对不同免疫状态大鼠NK细胞活性影响 | 第39-40页 |
· 免疫第 6d IRPS对不同免疫状态大鼠OVA抗体生成的影响 | 第40页 |
· 免疫第 12d IRPS对不同免疫状态大鼠T淋巴细胞和B淋巴细胞增殖的影响 | 第40-41页 |
· 免疫第 12d IRPS对不同免疫状态大鼠NK细胞活性的影响 | 第41页 |
· 免疫第 12d IRPS对不同免疫状态大鼠OVA抗体生成的影响 | 第41-42页 |
3 讨论 | 第42-44页 |
试验四 IRPS对不同免疫状态大鼠免疫调节因子的影响 | 第44-60页 |
1 材料和方法 | 第44-45页 |
· 材料 | 第44页 |
· 实验动物分组与模型构建 | 第44页 |
· 细胞因子的检测 | 第44-45页 |
· 试剂准备 | 第44页 |
· 试验流程 | 第44-45页 |
2 结果 | 第45-56页 |
· IRPS对IFN-γ表达的影响 | 第45-46页 |
· IRPS对IL-2 表达的影响 | 第46-48页 |
· IRPS对IL-4 表达的影响 | 第48-50页 |
· IRPS对IL-6 表达的影响 | 第50-52页 |
· IRPS对IL-10表达的影响 | 第52-54页 |
· IRPS对TNF-a表达的影响 | 第54-56页 |
3 讨论 | 第56-60页 |
· IRPS对Th1型细胞因子的影响 | 第56-57页 |
· IRPS对Th2型细胞因子的影响 | 第57页 |
· IRPS对炎性因子分泌的影响 | 第57-58页 |
· IRPS对不同免疫状态大鼠因子的双向调节作用 | 第58-60页 |
试验五 板蓝根多糖对不同免疫状态大鼠转录因子T-bet、GATA3的影响 | 第60-70页 |
1 材料与方法 | 第60-61页 |
· 材料 | 第60页 |
· 仪器 | 第60页 |
· 实验动物分组与模型建造 | 第60页 |
· 转录因子T-bet、GATA3 mRNA的检测 | 第60-61页 |
· 数据处理和统计学分析 | 第61页 |
2 结果 | 第61-67页 |
· 不同免疫状态大鼠T-bet mRNA的表达 | 第61页 |
· IRPS对免疫功能正常大鼠T-bet mRNA表达影响 | 第61-62页 |
· IRPS对免疫亢进大鼠T-bet mRNA表达影响 | 第62页 |
· IRPS对免疫抑制大鼠T-bet mRNA表达影响 | 第62-63页 |
· 不同免疫状态大鼠GATA3 mRNA的表达 | 第63页 |
· IRPS对免疫功能正常大鼠GATA3 mRNA表达的影响 | 第63-64页 |
· IRPS对免疫亢进大鼠GATA3 mRNA表达的影响 | 第64页 |
· IRPS对免疫抑制大鼠GATA3 mRNA表达的影响 | 第64-65页 |
· 不同免疫状态大鼠T-bet/GATA3比值的变化 | 第65-66页 |
· IRPS对免疫功能正常大鼠T-bet/GATA3的影响 | 第66页 |
· IRPS对免疫亢进组大鼠T-bet/GATA3的影响 | 第66-67页 |
· IRPS对免疫抑制大鼠T-bet/GATA3的影响 | 第67页 |
3 讨论 | 第67-70页 |
· IRPS对正常免疫状态大鼠T-bet/GATA3的影响 | 第67页 |
· IRPS对免疫亢进大鼠T-bet/GATA3比值的影响 | 第67-68页 |
· IRPS对免疫抑制大鼠T-bet/GATA3比值的影响 | 第68页 |
· Cy对T-bet mRNA、GATA3 mRNA的表达以及机体免疫的影响 | 第68-69页 |
· IRPS对T-bet mRNA、GATA3 mRNA的表达以及机体免疫的影响 | 第69-70页 |
全文结论 | 第70-72页 |
参考文献 | 第72-80页 |
英文摘要 | 第80-81页 |