论文目录 | |
中文摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-14页 |
英文缩略词表 | 第14-15页 |
引言 | 第15-16页 |
第一篇 文献综述 | 第16-27页 |
第一章 吡虫啉农药概述 | 第16-20页 |
1.1 吡虫啉简介 | 第16页 |
1.2 吡虫啉农药性质 | 第16-17页 |
1.3 吡虫啉致病机理及危害 | 第17页 |
1.4 吡虫啉残留现状 | 第17-18页 |
1.5 吡虫啉农药残留分析 | 第18-20页 |
1.5.1 仪器分析法 | 第18-19页 |
1.5.2 免疫分析法 | 第19-20页 |
第二章 金纳米材料在免疫分析中的应用进展 | 第20-27页 |
2.1 AuNPs在免疫检测中的应用 | 第20-23页 |
2.1.1 AuNPs的合成 | 第20-21页 |
2.1.2 AuNPs在免疫学分析中应用 | 第21-23页 |
2.2 金纳米双锥(AuBPs)在免疫学检测中的应用 | 第23-27页 |
2.2.1 AuBPs简介 | 第23页 |
2.2.2 AuBPs的制备 | 第23-24页 |
2.2.3 AuBPs在免疫学检测中的应用 | 第24-27页 |
第二篇 研究内容 | 第27-68页 |
实验一 吡虫啉间接竞争ELISA方法的建立 | 第27-39页 |
1.1 材料 | 第27-29页 |
1.1.1 试剂与耗材 | 第27-28页 |
1.1.2 仪器设备 | 第28页 |
1.1.3 常用试剂配制 | 第28-29页 |
1.2 方法 | 第29-31页 |
1.2.1 ic-ELISA检测程序 | 第29页 |
1.2.2 抗原抗体最佳工作浓度的优化 | 第29页 |
1.2.3 最佳包被条件的优化 | 第29-30页 |
1.2.4 最佳封闭剂的确定 | 第30页 |
1.2.5 酶标二抗最佳作用时间的确定 | 第30页 |
1.2.6 底物最佳反应时间 | 第30页 |
1.2.7 标准曲线的建立 | 第30页 |
1.2.8 特异性分析 | 第30-31页 |
1.2.9 模拟样本添加回收试验 | 第31页 |
1.3 结果 | 第31-36页 |
1.3.1 抗原抗体最佳工作浓度的确定 | 第31页 |
1.3.2 最佳包被条件的选择 | 第31-32页 |
1.3.4 最佳封闭剂的选择 | 第32-33页 |
1.3.5 二抗最佳作用时间的优化 | 第33页 |
1.3.6 底物最佳作用时间的优化 | 第33-34页 |
1.3.7 标准曲线的建立 | 第34页 |
1.3.8 特异性分析 | 第34-35页 |
1.3.9 加标回收率的测定 | 第35-36页 |
1.4 讨论 | 第36-38页 |
1.4.1 ic-ELISA方法的优化 | 第36-37页 |
1.4.2 ic-ELISA方法的特异性 | 第37-38页 |
1.4.3 样品基质的影响 | 第38页 |
1.4.4 模拟样品加标检测 | 第38页 |
1.5 小结 | 第38-39页 |
实验二 基于纳米胶囊探针的吡虫啉检测方法的建立 | 第39-52页 |
2.1 材料 | 第40-42页 |
2.1.1 试剂与耗材 | 第40-41页 |
2.1.2 仪器设备 | 第41页 |
2.1.3 常用试剂配制 | 第41-42页 |
2.2 方法 | 第42-45页 |
2.2.1 Au NPs的制备 | 第42-43页 |
2.2.2 纳米胶囊探针的制备 | 第43页 |
2.2.3 纳米胶囊探针的合成验证 | 第43页 |
2.2.4 基于纳米胶囊的免疫检测步骤 | 第43-44页 |
2.2.5 纳米胶囊最佳Ab2用量的优化 | 第44页 |
2.2.6 最佳探针稀释PH的优化 | 第44页 |
2.2.7 最佳探针稀释液的优化 | 第44页 |
2.2.8 探针稳定性测试 | 第44页 |
2.2.9 标准曲线的建立 | 第44页 |
2.2.10 加标回收 | 第44-45页 |
2.3 结果 | 第45-50页 |
2.3.1 纳米胶囊的合成验证 | 第45-46页 |
2.3.2 纳米胶囊最佳Ab2用量优化 | 第46-47页 |
2.3.3 最佳探针稀释p H的优化 | 第47页 |
2.3.4 最佳探针稀释液的优化 | 第47-48页 |
2.3.5 探针稳定性测试 | 第48页 |
2.3.6 标准曲线的建立 | 第48-49页 |
2.3.7 加标回收结果 | 第49-50页 |
2.4 讨论 | 第50-51页 |
2.4.1 纳米胶囊探针优点 | 第50-51页 |
2.4.2 关于纳米胶囊探针的优化 | 第51页 |
2.5 小结 | 第51-52页 |
实验三 基于金纳米双锥的吡虫啉等离子ELISA方法的建立(AuBPs-p-ELISA) | 第52-68页 |
3.1 材料 | 第53-55页 |
3.1.1 试剂与耗材 | 第53-54页 |
3.1.2 仪器设备 | 第54页 |
3.1.3 常用试剂配制 | 第54-55页 |
3.2 方法 | 第55-58页 |
3.2.1 AuBPs的制备 | 第55页 |
3.2.2 AuBPs的纯化 | 第55-56页 |
3.2.3 AuBPs-p-ELISA的可行性 | 第56页 |
3.2.4 AuBPs-p-ELISA的基本步骤 | 第56-57页 |
3.2.5 AuBPs-p-ELISA反应中DEA缓冲液浓度的优化 | 第57页 |
3.2.6 AuBPs-p-ELISA反应中 4-AAP浓度的优化 | 第57页 |
3.2.7 AuBPs-p-ELISA反应中Ag~+ 浓度的优化 | 第57页 |
3.2.8 AuBPs-p-ELISA反应中底物作用时间的优化 | 第57页 |
3.2.9 AuBPs-p-ELISA标准曲线的建立 | 第57-58页 |
3.2.10 模拟样本加标回收检测 | 第58页 |
3.3 结果 | 第58-66页 |
3.3.1 AuBPs的制备 | 第58-60页 |
3.3.2 AuBPs-p-ELISA的可行性 | 第60-61页 |
3.3.3 AuBPs-p-ELISA反应中底物缓冲液DEA浓度的优化 | 第61页 |
3.3.4 AuBPs-p-ELISA反应中 4-AAP浓度的优化 | 第61-62页 |
3.3.5 AuBPs-p-ELISA反应中Ag~+ 浓度的优化 | 第62-63页 |
3.3.6 AuBPs-p-ELISA反应中底物作用时间的优化 | 第63页 |
3.3.7 AuBPs-p-ELISA标准曲线的建立 | 第63-65页 |
3.3.8 加标回收率的测定 | 第65-66页 |
3.4 讨论 | 第66-67页 |
3.4.1 AuNBs的制备 | 第66页 |
3.4.2 AuBPs-p-ELISA与传统ic-ELISA比较 | 第66-67页 |
3.5 小结 | 第67-68页 |
结论 | 第68-69页 |
参考文献 | 第69-79页 |
导师简介 | 第79-80页 |
作者简介及科研成果 | 第80-81页 |
致谢 | 第81页 |