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基于金纳米材料的吡虫啉免疫学检测方法的建立

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基于金纳米材料的吡虫啉免疫学检测方法的建立
论文目录
 
中文摘要第1-8页
Abstract第8-14页
英文缩略词表第14-15页
引言第15-16页
第一篇 文献综述第16-27页
第一章 吡虫啉农药概述第16-20页
  1.1 吡虫啉简介第16页
  1.2 吡虫啉农药性质第16-17页
  1.3 吡虫啉致病机理及危害第17页
  1.4 吡虫啉残留现状第17-18页
  1.5 吡虫啉农药残留分析第18-20页
    1.5.1 仪器分析法第18-19页
    1.5.2 免疫分析法第19-20页
第二章 金纳米材料在免疫分析中的应用进展第20-27页
  2.1 AuNPs在免疫检测中的应用第20-23页
    2.1.1 AuNPs的合成第20-21页
    2.1.2 AuNPs在免疫学分析中应用第21-23页
  2.2 金纳米双锥(AuBPs)在免疫学检测中的应用第23-27页
    2.2.1 AuBPs简介第23页
    2.2.2 AuBPs的制备第23-24页
    2.2.3 AuBPs在免疫学检测中的应用第24-27页
第二篇 研究内容第27-68页
实验一 吡虫啉间接竞争ELISA方法的建立第27-39页
  1.1 材料第27-29页
    1.1.1 试剂与耗材第27-28页
    1.1.2 仪器设备第28页
    1.1.3 常用试剂配制第28-29页
  1.2 方法第29-31页
    1.2.1 ic-ELISA检测程序第29页
    1.2.2 抗原抗体最佳工作浓度的优化第29页
    1.2.3 最佳包被条件的优化第29-30页
    1.2.4 最佳封闭剂的确定第30页
    1.2.5 酶标二抗最佳作用时间的确定第30页
    1.2.6 底物最佳反应时间第30页
    1.2.7 标准曲线的建立第30页
    1.2.8 特异性分析第30-31页
    1.2.9 模拟样本添加回收试验第31页
  1.3 结果第31-36页
    1.3.1 抗原抗体最佳工作浓度的确定第31页
    1.3.2 最佳包被条件的选择第31-32页
    1.3.4 最佳封闭剂的选择第32-33页
    1.3.5 二抗最佳作用时间的优化第33页
    1.3.6 底物最佳作用时间的优化第33-34页
    1.3.7 标准曲线的建立第34页
    1.3.8 特异性分析第34-35页
    1.3.9 加标回收率的测定第35-36页
  1.4 讨论第36-38页
    1.4.1 ic-ELISA方法的优化第36-37页
    1.4.2 ic-ELISA方法的特异性第37-38页
    1.4.3 样品基质的影响第38页
    1.4.4 模拟样品加标检测第38页
  1.5 小结第38-39页
实验二 基于纳米胶囊探针的吡虫啉检测方法的建立第39-52页
  2.1 材料第40-42页
    2.1.1 试剂与耗材第40-41页
    2.1.2 仪器设备第41页
    2.1.3 常用试剂配制第41-42页
  2.2 方法第42-45页
    2.2.1 Au NPs的制备第42-43页
    2.2.2 纳米胶囊探针的制备第43页
    2.2.3 纳米胶囊探针的合成验证第43页
    2.2.4 基于纳米胶囊的免疫检测步骤第43-44页
    2.2.5 纳米胶囊最佳Ab2用量的优化第44页
    2.2.6 最佳探针稀释PH的优化第44页
    2.2.7 最佳探针稀释液的优化第44页
    2.2.8 探针稳定性测试第44页
    2.2.9 标准曲线的建立第44页
    2.2.10 加标回收第44-45页
  2.3 结果第45-50页
    2.3.1 纳米胶囊的合成验证第45-46页
    2.3.2 纳米胶囊最佳Ab2用量优化第46-47页
    2.3.3 最佳探针稀释p H的优化第47页
    2.3.4 最佳探针稀释液的优化第47-48页
    2.3.5 探针稳定性测试第48页
    2.3.6 标准曲线的建立第48-49页
    2.3.7 加标回收结果第49-50页
  2.4 讨论第50-51页
    2.4.1 纳米胶囊探针优点第50-51页
    2.4.2 关于纳米胶囊探针的优化第51页
  2.5 小结第51-52页
实验三 基于金纳米双锥的吡虫啉等离子ELISA方法的建立(AuBPs-p-ELISA)第52-68页
  3.1 材料第53-55页
    3.1.1 试剂与耗材第53-54页
    3.1.2 仪器设备第54页
    3.1.3 常用试剂配制第54-55页
  3.2 方法第55-58页
    3.2.1 AuBPs的制备第55页
    3.2.2 AuBPs的纯化第55-56页
    3.2.3 AuBPs-p-ELISA的可行性第56页
    3.2.4 AuBPs-p-ELISA的基本步骤第56-57页
    3.2.5 AuBPs-p-ELISA反应中DEA缓冲液浓度的优化第57页
    3.2.6 AuBPs-p-ELISA反应中 4-AAP浓度的优化第57页
    3.2.7 AuBPs-p-ELISA反应中Ag~+ 浓度的优化第57页
    3.2.8 AuBPs-p-ELISA反应中底物作用时间的优化第57页
    3.2.9 AuBPs-p-ELISA标准曲线的建立第57-58页
    3.2.10 模拟样本加标回收检测第58页
  3.3 结果第58-66页
    3.3.1 AuBPs的制备第58-60页
    3.3.2 AuBPs-p-ELISA的可行性第60-61页
    3.3.3 AuBPs-p-ELISA反应中底物缓冲液DEA浓度的优化第61页
    3.3.4 AuBPs-p-ELISA反应中 4-AAP浓度的优化第61-62页
    3.3.5 AuBPs-p-ELISA反应中Ag~+ 浓度的优化第62-63页
    3.3.6 AuBPs-p-ELISA反应中底物作用时间的优化第63页
    3.3.7 AuBPs-p-ELISA标准曲线的建立第63-65页
    3.3.8 加标回收率的测定第65-66页
  3.4 讨论第66-67页
    3.4.1 AuNBs的制备第66页
    3.4.2 AuBPs-p-ELISA与传统ic-ELISA比较第66-67页
  3.5 小结第67-68页
结论第68-69页
参考文献第69-79页
导师简介第79-80页
作者简介及科研成果第80-81页
致谢第81页

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