论文目录 | |
英文缩略表 | 第10-11
页 |
摘要 | 第11-14
页 |
英文摘要 | 第14-17
页 |
引言 | 第17-25
页 |
1. 病原学 | 第18-20
页 |
1.1 病毒分类及毒株分类 | 第18
页 |
1.2 稳定性 | 第18-19
页 |
1.3 核酸及蛋白质组成 | 第19
页 |
1.4 基因组复制 | 第19-20
页 |
1.5 宿主范围 | 第20
页 |
2. 流行病学 | 第20-21
页 |
2.1 病毒的传播 | 第20-21
页 |
3. 发病机理 | 第21-22
页 |
4. 临床及病理变化 | 第22
页 |
4.1 病理变化 | 第22
页 |
4.2 矮小综合征 | 第22
页 |
4.3 慢性瘤形成 | 第22
页 |
5. 诊断 | 第22-23
页 |
5.1 病毒分离与鉴定 | 第22-23
页 |
5.2 血清学检测 | 第23
页 |
5.3 鉴别诊断 | 第23
页 |
6. 预防和控制 | 第23-24
页 |
7. 本研究的目的和意义 | 第24-25
页 |
研究内容 | 第25-75
页 |
试验一 昆虫细胞表达的网状内皮组织增殖症病毒囊膜糖蛋白及其免疫性 | 第25-36
页 |
1 材料和方法 | 第26-28
页 |
1.1 材料 | 第26
页 |
1.2 引物设计和env基因的PCR扩增 | 第26
页 |
1.3 表达REV env基因的重组杆状病毒全基因组质粒的构建 | 第26-27
页 |
1.4 含REV env基因的重组杆状病毒全基因组质粒NDA转染Sf9细胞 | 第27
页 |
1.5 重组杆状病毒感染细胞中REV env基因表达的检测 | 第27-28
页 |
1.6 env基因重组表达产物在SPF鸡的免疫反应及抗体水平的检测 | 第28
页 |
1.7 env基因重组表达产物免疫SPF鸡后的REV病毒攻毒试验 | 第28
页 |
2 结果 | 第28-32
页 |
2.1 含REV env基因的重组供体质粒的酶切鉴定 | 第28-29
页 |
2.2 含REV env基因重组杆状病毒全基因组质粒DNA的验证 | 第29
页 |
2.3 表达REV env重组杆状病毒的检测 | 第29-31
页 |
2.4 重组杆状病毒感染细胞免疫SPF鸡后抗REV抗体的检测 | 第31-32
页 |
2.5 env基因重组表达产物免疫SPF鸡后的REV病毒攻毒试验结果 | 第32
页 |
3 讨论 | 第32-34
页 |
参考文献 | 第34-36
页 |
试验二 REV油乳苗的研究及抗REV抗体的跟踪调查 | 第36-43
页 |
1. 材料和方法 | 第37-39
页 |
1.1 病毒来源 | 第37
页 |
1.2 试验动物 | 第37
页 |
1.3 成纤维细胞(CEF)的制备 | 第37
页 |
1.4 病毒的增殖 | 第37
页 |
1.5 阳性细胞率的检测 | 第37-38
页 |
1.6 REV油乳苗的制备 | 第38
页 |
1.7 免疫试验 | 第38
页 |
1.8 荧光检测用细胞板的制备 | 第38-39
页 |
1.9 IFA检测抗成纤维细胞抗体 | 第39
页 |
1.10 雏鸡攻毒试验及病毒血症的测定 | 第39
页 |
2. 结果 | 第39-42
页 |
2.1 A组鸡的免疫效果及抗体水平与其卵黄抗体和雏鸡母源抗体的关系 | 第40-41
页 |
2.2 B组鸡的免疫效果及抗体水平与其卵黄抗体和雏鸡母源抗体的关系 | 第41
页 |
2.3 IFA检测母鸡抗体、卵黄抗体和雏鸡母源抗体的结果比较 | 第41
页 |
2.4 雏鸡攻毒试验及病毒血症的测定结果 | 第41-42
页 |
3 结论 | 第42-43
页 |
试验三 血清学方法比较不同REV毒株之间交叉免疫原性 | 第43-51
页 |
1 材料及方法 | 第44-46
页 |
1.1 病毒及其来源 | 第44
页 |
1.2 试验动物 | 第44
页 |
1.3 CEF的制备 | 第44
页 |
1.4 病毒的增殖 | 第44
页 |
1.5 病毒含量的测定 | 第44-45
页 |
1.6 荧光检测用细胞板的制备 | 第45
页 |
1.7 REV单因子血清的制备 | 第45
页 |
1.8 IFA检测REV之间的交叉免疫反应 | 第45-46
页 |
1.9 病毒交叉中和试验设计 | 第46
页 |
2 结果 | 第46-49
页 |
2.1 病毒培养后病毒效价的检测结果 | 第46-47
页 |
2.2 IFA检测REV之间的交叉免疫反应结果 | 第47-48
页 |
2.3 病毒交叉中和试验检测结果 | 第48-49
页 |
3 讨论 | 第49-51
页 |
试验四 在隔离条件下66日龄鸡无法水平传播禽网状内皮组织增殖病病毒 | 第51-58
页 |
1 材料与方法 | 第52-53
页 |
1.1 病毒及其来源 | 第52
页 |
1.2 试验动物 | 第52
页 |
1.3 CEF的制备 | 第52
页 |
1.4 病毒的增殖及定量 | 第52
页 |
1.5 鸡血液中病毒效价的测定 | 第52-53
页 |
1.6 试验设计 | 第53
页 |
1.7 血清中抗REV抗体效价的ELISA检测 | 第53
页 |
2 结果 | 第53-56
页 |
2.1 鸡血液中病毒含量的测定 | 第54
页 |
2.2 血清中抗REV抗体的ELISA检测结果 | 第54-56
页 |
3 讨论 | 第56-58
页 |
试验五 斑点杂交试验检测禽REV在雏鸡体内的分布 | 第58-66
页 |
1 材料和方法 | 第59-62
页 |
1.1 病毒来源 | 第59
页 |
1.2 试验动物 | 第59
页 |
1.3 成纤维细胞(CEF)的制备 | 第59
页 |
1.4 病毒的增殖 | 第59
页 |
1.5 病毒含量的测定 | 第59-60
页 |
1.6 动物实验设计 | 第60
页 |
1.7 组织 DNA的提取 | 第60
页 |
1.8 标记探针的制备 | 第60-61
页 |
1.9 标记探针对样品DNA的检测 | 第61-62
页 |
2 结果 | 第62-63
页 |
2.1 点杂交结果 | 第62-63
页 |
3 讨论 | 第63-66
页 |
试验六 ELISA和IFA检测抗REV母源抗体滴度相关性比较 | 第66-75
页 |
1 材料及方法 | 第66-67
页 |
1.1 实验动物 | 第66-67
页 |
1.2 实验设计 | 第67
页 |
2 试验结果 | 第67-68
页 |
2.1 ELISA和IFA测定结果相关性比较 | 第67-68
页 |
2.2 EUSA和IFA检测血清抗体灵敏度和稳定性比较 | 第68
页 |
2.3 对REV的母源抗体的半衰期 | 第68
页 |
3 讨论 | 第68-70
页 |
参考文献 | 第70-75
页 |
结论 | 第75-76
页 |
参考文献 | 第76-86
页 |
个人简介及硕士期间发表的学术论文目录 | 第86-89
页 |
致谢 | 第89
页 |