论文目录 | |
摘要 | 第1-10页 |
Abstract | 第10-13页 |
前言 | 第13-15页 |
研究背景 | 第13-14页 |
研究意义 | 第14-15页 |
第一部分 探针构建以及GFAP在U87细胞中的力学活动 | 第15-30页 |
1. 实验材料 | 第15-17页 |
1.1 实验细胞 | 第15页 |
1.2 实验试剂 | 第15-16页 |
1.3 实验仪器 | 第16-17页 |
1.4 实验相关溶剂配置 | 第17页 |
2. 实验方法 | 第17-22页 |
2.1 星形胶质细胞培养 | 第17-18页 |
2.2 AcpA、TcpT、GcpG探针的构建和提取 | 第18-19页 |
2.3 质粒转染 | 第19页 |
2.4 cpstFRET测量和分析 | 第19页 |
2.5 FRET-AB和FRAP实验 | 第19-20页 |
2.6 免疫印迹检测目的蛋白 | 第20-21页 |
2.7 U87免疫荧光实验 | 第21-22页 |
2.8 U87钙黄绿素染色实验 | 第22页 |
2.9 细胞横截面积的计算 | 第22页 |
2.10 细胞质溶液渗透压测定 | 第22页 |
3. 统计学分析 | 第22-23页 |
4. 结果 | 第23-30页 |
4.1 FRET张力检测系统建立和荧光张力探针构建及验证 | 第23-26页 |
4.2 GFAP张力参与细胞形态改变 | 第26-27页 |
4.3 细胞骨架解聚生成的蛋白纳米颗粒导致渗透压力和GFAP张力增强 | 第27-30页 |
第二部分 谷氨酸细胞毒性水肿模型渗透压力调控GFAP骨架张力 | 第30-42页 |
1. 实验材料 | 第30-31页 |
1.1 实验细胞 | 第30页 |
1.2 实验试剂 | 第30页 |
1.3 实验仪器 | 第30页 |
1.4 实验相关溶剂配置 | 第30-31页 |
2. 实验方法 | 第31页 |
2.1 星形胶质细胞培养 | 第31页 |
2.2 质粒转染 | 第31页 |
2.3 cpstFRET测量和分析 | 第31页 |
2.4 U87免疫荧光实验 | 第31页 |
2.5 U87钙黄绿素染色实验 | 第31页 |
2.6 细胞横截面积的计算 | 第31页 |
2.7 细胞质溶液渗透压测定 | 第31页 |
3. 统计学分析 | 第31页 |
4. 结果 | 第31-42页 |
4.1 GFAP张力参与细胞水肿模型力学活动 | 第31-33页 |
4.2 微丝、微管参与调控谷氨酸水肿模型GFAP张力 | 第33页 |
4.3 骨架稳定和动力分子对GFAP张力的影响 | 第33-35页 |
4.4 细胞骨架解聚因子及钙离子对细胞水肿的作用 | 第35-37页 |
4.5 抑制骨架解聚,抑制离子通道联合临床药物减轻细胞渗透压力 | 第37-40页 |
4.6 联合药物抑制GFAP骨架张力 | 第40-42页 |
第三部分 原代星形胶质细胞及SD大鼠谷氨酸细胞毒性脑水肿实验 | 第42-48页 |
1. 实验材料 | 第42页 |
1.1 实验动物 | 第42页 |
1.2 实验试剂 | 第42页 |
1.3 实验仪器 | 第42页 |
1.4 实验相关溶剂配置 | 第42页 |
2. 实验方法 | 第42-43页 |
2.1 原代星形胶质细胞提取和培养 | 第42-43页 |
2.2 质粒转染 | 第43页 |
2.3 cpstFRET测量和分析 | 第43页 |
2.4 免疫荧光实验 | 第43页 |
2.5 钙黄绿素染色实验 | 第43页 |
2.6 谷氨酸细胞毒性脑水肿大鼠模型构建 | 第43页 |
2.7 细胞质溶液渗透压测定 | 第43页 |
2.8 苏木精-伊红染色实验 | 第43页 |
3. 统计学分析 | 第43-44页 |
4. 结果 | 第44-48页 |
4.1 原代星形胶质细胞提取及鉴定 | 第44页 |
4.2 联合药物对原代星形胶质细胞GFAP张力和渗透压力的作用 | 第44-46页 |
4.3 联合药物对SD大鼠谷氨酸细胞毒性脑水肿的治疗作用 | 第46页 |
4.4 联合药物对SD大鼠谷氨酸细胞毒性脑水肿脑组织细胞形态的作用 | 第46-48页 |
讨论 | 第48-51页 |
总结 | 第51-52页 |
参考文献 | 第52-56页 |
综述 | 第56-65页 |
参考文献 | 第61-65页 |
附录 | 第65-67页 |
缩略词表 | 第65-67页 |
在校期间攻读硕士学位学术成果 | 第67-68页 |
致谢 | 第68页 |