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转录因子FOXP2参与乳腺癌EMT过程的初步研究

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转录因子FOXP2参与乳腺癌EMT过程的初步研究
论文目录
 
摘要第1-6页
Abstract第6-8页
英文缩写第8-12页
第1章 绪论第12-23页
  1.1 乳腺癌第12-13页
    1.1.1 概述第12页
    1.1.2 乳腺癌的分子表型第12-13页
  1.2 乳腺癌的转移—EMT过程第13-19页
    1.2.1 EMT的概述第13-14页
    1.2.2 EMT的分类第14-16页
    1.2.3 EMT相关信号通路第16-18页
    1.2.4 EMT研究现状第18页
    1.2.5 肿瘤转移后的治疗第18-19页
  1.3 转录因子-FOXP2第19-21页
    1.3.1 转录因子概述-Fox家族第19页
    1.3.2 FOXP2的结构第19-20页
    1.3.3 FOXP2的生物学功能和研究进展第20-21页
  1.4 本文章的研究目的和意义第21-23页
第2章 FOXP2与乳腺癌EMT及生存预后的相关性分析第23-37页
  2.1 前言第23页
  2.2 实验材料和实验仪器第23-25页
    2.2.1 临床样本第23-24页
    2.2.2 实验细胞第24页
    2.2.3 实验试剂第24-25页
    2.2.4 实验仪器第25页
  2.3 实验方法第25-34页
    2.3.1 临床样本的处理第25页
    2.3.2 细胞株复苏、培养和冻存第25-27页
    2.3.3 Western bloting(WB)实验第27-30页
    2.3.4 RNA的提取以及逆转录cDNA第30-32页
    2.3.5 实时定量PCR(qRT-PCR)第32-33页
    2.3.6 Transwell实验第33页
    2.3.7 统计分析第33-34页
  2.4 结果第34-35页
    2.4.1 FOXP2、E-cadherin和Vimentin在临床样本中表达的相关性以及生存分析第34-35页
    2.4.2 FOXP2与EMT研究体系的确定第35页
  2.5 小结第35-37页
第3章 FOXP2高表达抑制MDA-MB-231细胞的间质表型和迁移第37-44页
  3.1 前言第37页
  3.2 实验材料和实验仪器第37-40页
    3.2.1 实验细胞第37-38页
    3.2.2 实验试剂第38-39页
    3.2.3 实验仪器第39-40页
  3.3 实验方法第40-42页
    3.3.1 细胞培养第40页
    3.3.2 pcDNA3.1-his-FOXP2重组质粒的大提第40-41页
    3.3.3 脂质体转染第41-42页
    3.3.4 Western bloting(WB)实验第42页
    3.3.5 荧光定量PCR第42页
    3.3.6 Transwell实验第42页
    3.3.7 统计分析第42页
  3.4 结果和讨论第42-43页
    3.4.1 高表达FOXP2抑制MDA-MB-231细胞的间质表型和迁移能力第42-43页
  3.5 小结第43-44页
第4章 干扰FOXP2促进MCF-7细胞的迁移、增殖和成瘤能力第44-56页
  4.1 前言第44页
  4.2 实验材料和实验试剂第44-47页
    4.2.1 实验细胞第44-45页
    4.2.2 实验试剂第45-46页
    4.2.3 实验仪器第46-47页
  4.3 实验方法第47-52页
    4.3.1 细胞培养第47页
    4.3.2 慢病毒的制备和感染第47-50页
    4.3.3 WB检测MCF-7中shFOXP2干扰效果第50-51页
    4.3.4 荧光定量PCR第51页
    4.3.5 Transwell实验第51页
    4.3.6 MTT检测细胞增殖能力第51页
    4.3.7 平板克隆形成实验检测细胞的克隆形成率第51页
    4.3.8 统计分析第51-52页
  4.4 结果和讨论第52-55页
    4.4.1 慢病毒的构建和成功包装第52-53页
    4.4.2 沉默FOXP2表达抑制乳腺癌MCF-7细胞的上皮表型第53-54页
    4.4.3 沉默FOXP2的表达抑制乳腺癌MCF-7细胞的增殖和成瘤能力第54-55页
  4.5 小结第55-56页
结论和展望第56-57页
参考文献第57-66页
附录A 常用缓冲液和试剂配方第66-67页
附录B 攻读学位期间发表的论文第67-68页
致谢第68页

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