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好食脉孢菌发酵麸皮制备游离阿魏酸及其改性研究

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好食脉孢菌发酵麸皮制备游离阿魏酸及其改性研究
论文目录
 
摘要第1-6页
Abstract第6-7页
1 绪论第12-19页
    1.1 概述第12-14页
        1.1.1 好食脉孢菌第12页
        1.1.2 小麦麸皮研究第12-13页
        1.1.3 固态发酵技术第13页
        1.1.4 固态发酵麸皮过程中阿魏酸的释放第13-14页
        1.1.5 饲料添加剂简介第14页
    1.2 阿魏酸及其衍生物概况第14-16页
        1.2.1 阿魏酸的性质和来源第14-15页
        1.2.2 阿魏酸的部分功能与作用第15页
        1.2.3 阿魏酸衍生物简介与常用合成方法第15-16页
    1.3 脂肪酶与杂化酶第16-17页
        1.3.1 脂肪酶第16-17页
        1.3.2 纳米金简介第17页
        1.3.3 酶-纳米金杂化研究第17页
    1.4 论文研究背景目的主要内容第17-18页
        1.4.1 研究背景及目的第17-18页
        1.4.2 主要研究内容第18页
    1.5 试验研究创新点第18-19页
2 好食脉孢菌发酵麸皮制取游离型阿魏酸的研究第19-30页
    2.1 引言第19页
    2.2 试验材料与方法第19-20页
        2.2.1 试验材料试剂第19-20页
        2.2.2 试验仪器设备第20页
    2.3 试验方法第20-24页
        2.3.1 阿魏酸标准曲线的构建第20-21页
        2.3.2 阿魏酸酯酶酶活测定第21页
        2.3.3 好食脉孢菌固态发酵第21-22页
        2.3.4 血球计数法及接种量的确定第22页
        2.3.5 总阿魏酸含量的检测第22页
        2.3.6 游离型阿魏酸的提取第22-23页
        2.3.7 阿魏酸得率的计算方法第23页
        2.3.8 培养条件优化单因素试验第23-24页
        2.3.9 正交试验设计第24页
    2.4 结果与讨论第24-29页
        2.4.1 单因素试验结果讨论第24-27页
        2.4.2 正交试验结果第27-28页
        2.4.3 发酵时间对阿魏酸酯酶酶活的影响第28-29页
        2.4.4 验证试验第29页
    2.5 本章小结第29-30页
3 固定化脂肪酶催化葡萄糖酯化改性阿魏酸的研究第30-42页
    3.1 引言第30页
    3.2 实验材料和仪器第30-31页
        3.2.1 实验材料第30页
        3.2.2 主要实验仪器第30-31页
    3.3 试验方法第31-32页
        3.3.0 有机反应介质脱水第31页
        3.3.1 脂肪酶催化阿魏酸葡萄糖酯的合成第31页
        3.3.2 阿魏酸转化率的测定第31-32页
        3.3.3 产物的收集第32页
        3.3.4 阿魏酸葡萄糖酯定性检测方法第32页
    3.4 阿魏酸葡萄糖酯合成反应单因素试验第32-33页
        3.4.1 反应介质极性的确定第32-33页
        3.4.2 反应时间对阿魏酸转化率的影响第33页
        3.4.3 反应温度对阿魏酸转化率的影响第33页
        3.4.4 脂肪酶添加量对阿魏酸转化率的影响第33页
        3.4.5 底物酸糖摩尔比对阿魏酸的影响第33页
    3.5 阿魏酸葡萄糖酯合成反应正交试验设计第33页
    3.6 结果与讨论第33-41页
        3.6.1 阿魏酸葡萄糖酯定性检测结果第33-36页
        3.6.2 单因素实验结果与讨论第36-40页
        3.6.3 正交实验设计结果与讨论第40-41页
        3.6.4 验证试验第41页
    3.7 本章小结第41-42页
4 酶-金粒子杂化体系对合成阿魏酸糖酯的研究第42-55页
    4.1 引言第42页
    4.2 主要试验材料与设备第42-43页
        4.2.1 主要试验材料第42-43页
        4.2.2 主要试验仪器第43页
    4.3 试验方法第43-44页
        4.3.1 纳米金溶液的制备第43页
        4.3.2 纳米金杂化酶的制备第43页
        4.3.3 纳米金粒径大小对杂化脂肪酶催化效果的影响第43页
        4.3.4 纳米金杂化温度对杂化脂肪酶催化效果的影响第43-44页
        4.3.5 纳米金杂化时间对杂化脂肪酶催化效果的影响第44页
        4.3.6 纳米金中酶用量对杂化脂肪酶催化效果的影响第44页
    4.4 结果与讨论第44-54页
        4.4.1 纳米金溶液紫外光谱分析第44-45页
        4.4.2 纳米金杂化脂肪酶紫外光谱分析第45-46页
        4.4.3 红外光谱分析第46-47页
        4.4.4 纳米金粒径大小对杂化酶催化效果的影响第47页
        4.4.5 纳米金杂化温度对杂化酶催化效果的影响第47-48页
        4.4.6 纳米金杂化时间对杂化酶催化效果的影响第48-49页
        4.4.7 纳米金溶液中酶用量对杂化脂肪酶催化效果的影响第49-50页
        4.4.8 验证试验第50-51页
        4.4.9 杂化酶与固定化脂肪酶催化反应对比第51-54页
            4.4.9.1 杂化酶催化反应添加量的确定第51页
            4.4.9.2 杂化酶催化反应时间的确定第51-52页
            4.4.9.3 杂化酶反应温度的确定第52-54页
    4.5 本章小结第54-55页
5 阿魏酸和阿魏酸葡萄糖酯生物特性研究第55-63页
    5.1 引言第55页
    5.2 试验主要原料及设备第55-56页
        5.2.1 试验主要原料及试剂第55页
        5.2.2 主要试验设备第55-56页
    5.3 试验方法第56-58页
        5.3.1 培养基的制备第56页
        5.3.2 水溶性检测第56页
        5.3.3 清除DPPH自由基能力的测定第56-57页
        5.3.4 清除羟基自由基能力的测定第57页
        5.3.5 对Fe~(2+)金属离子的螯合作用第57页
        5.3.6 对H_2O_2的清除能力第57页
        5.3.7 抑菌性试验第57-58页
    5.4 结果与讨论第58-62页
        5.4.1 水溶性检测第58页
        5.4.2 清除DPPH自由基能力的测定第58-59页
        5.4.3 羟自由基清除能力的测定第59-60页
        5.4.4 对Fe~(2+)金属离子的螯合作用的测定第60页
        5.4.5 对 H_2O_2的清除能力的检测第60-61页
        5.4.6 抑菌性试验第61-62页
    5.5 本章小结第62-63页
6 结论第63-65页
参考文献第65-72页
攻读学位期间发表的学术论文第72-73页
致谢第73页

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