论文目录 | |
致谢 | 第1-5页 |
摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-17页 |
1 绪论 | 第17-27页 |
1.1 多糖研究现状 | 第17页 |
1.1.1 多糖概述 | 第17页 |
1.2 灰树花多糖药用价值研究 | 第17-19页 |
1.2.1 抗肿瘤 | 第18页 |
1.2.2 抗炎 | 第18页 |
1.2.3 提高免疫力 | 第18页 |
1.2.4 保肝作用 | 第18-19页 |
1.3 多糖类药物大分子中的研究进展 | 第19-20页 |
1.3.1 多糖类药物大分子概况 | 第19页 |
1.3.2 FITC荧光标记技术概况 | 第19-20页 |
1.4 肠道上皮吸收途径的研究进展 | 第20-22页 |
1.4.1 肠道概述 | 第20页 |
1.4.2 肠道吸收屏障结构 | 第20-21页 |
1.4.3 肠上皮物质转运途径 | 第21-22页 |
1.5 Caco-2 细胞单层模型概述 | 第22-23页 |
1.6 本论文研究方案 | 第23-24页 |
1.7 课题研究的目的及意义 | 第24页 |
1.8 本课题创新点 | 第24-27页 |
2 灰树花多糖的纯化 | 第27-35页 |
2.1 引言 | 第27页 |
2.2 实验部分 | 第27-31页 |
2.2.1 实验材料 | 第27页 |
2.2.2 实验仪器 | 第27-28页 |
2.2.3 多糖的分离纯化 | 第28-29页 |
2.2.4 DEAE-纤维素层析柱的装柱与平衡 | 第29页 |
2.2.5 葡聚糖凝胶G-100装柱与平衡 | 第29-30页 |
2.2.6 多糖的理化性质鉴定 | 第30-31页 |
2.3 结果 | 第31-33页 |
2.3.1 多糖纯化 | 第31-32页 |
2.3.2 多糖理化性质 | 第32-33页 |
2.4 讨论 | 第33-35页 |
3 精制灰树花多糖的FITC荧光标记 | 第35-53页 |
3.1 引言 | 第35页 |
3.2 实验部分 | 第35-38页 |
3.2.1 材料与仪器 | 第35-36页 |
3.2.2 方法 | 第36-38页 |
3.2.3 数据处理 | 第38页 |
3.3 实验结果 | 第38-50页 |
3.3.1 灰树花多糖标记前后对比 | 第38-40页 |
3.3.2 FITC荧光光谱扫描 | 第40-41页 |
3.3.3 GRN-Tyr PAGE电泳 | 第41-42页 |
3.3.4 Sephadex G-100洗脱组分荧光扫描 | 第42-43页 |
3.3.5 GRN-Tyr-FITC PAGE电泳 | 第43-44页 |
3.3.6 GRN、膜分离浓缩液组分、1-2、1-3 混合组分紫外光谱扫描 | 第44-45页 |
3.3.7 FITC、GRN-Tyr-FITC稳定性 | 第45-49页 |
3.3.8 荧光素取代度计算 | 第49-50页 |
3.4 讨论 | 第50-53页 |
4 FITC荧光标记的灰树花多糖在Caco-2 细胞吸收模型的跨膜转运实验研究 | 第53-87页 |
4.1 引言 | 第53页 |
4.2 材料与仪器 | 第53-54页 |
4.2.1 细胞 | 第53页 |
4.2.2 实验试剂 | 第53-54页 |
4.2.3 试剂配制 | 第54页 |
4.2.4 实验仪器 | 第54页 |
4.3 实验方法 | 第54-59页 |
4.3.1 细胞培养 | 第54-55页 |
4.3.2 灰树花多糖的荧光标记 | 第55页 |
4.3.3 Caco-2 细胞吸收模型的建立 | 第55-58页 |
4.3.4 FITC标记的灰树花多糖跨膜转运实验研究 | 第58-59页 |
4.4 实验结果 | 第59-84页 |
4.4.1 细胞单层完整性检测实验结果 | 第59-68页 |
4.4.2 GRN-Tyr-FITC跨膜转运实验结果 | 第68-84页 |
4.5 讨论 | 第84-87页 |
5 结论 | 第87-89页 |
5.1 论文总结 | 第87-89页 |
参考文献 | 第89-97页 |
作者简历 | 第97-101页 |
学位论文数据集 | 第101页 |