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IL-34在乙型脑炎病毒感染过程中作用的研究

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IL-34在乙型脑炎病毒感染过程中作用的研究
论文目录
 
中文摘要第11-11页
Abstract第11-12页
1 前言第12-20页
  1.1 日本乙型脑炎第12-16页
    1.1.1 乙型脑炎概述第12-13页
    1.1.2 乙型脑炎病毒的遗传多样性第13-14页
    1.1.3 乙型脑炎病毒的基因结构第14页
    1.1.4 乙型脑炎的传播第14-15页
    1.1.5 乙型脑炎的临床表现第15页
    1.1.6 乙型脑炎的预防第15-16页
  1.2 白细胞介素第16-19页
    1.2.1 白细胞介素概述第16页
    1.2.2 参与调节免疫的白介素第16-18页
      1.2.2.1 白细胞介素 1(IL-1)第16-17页
      1.2.2.2 白细胞介素 2(IL-2)第17页
      1.2.2.3 白细胞介素 5(IL-5)第17页
      1.2.2.4 白细胞介素 6(IL-6)第17页
      1.2.2.5 白细胞介素 10(IL-10)第17页
      1.2.2.6 白细胞介素 12(IL-12)第17-18页
    1.2.3 白细胞介素 34(IL-34)第18-19页
      1.2.3.1 IL-34的发现第18页
      1.2.3.2 IL-34的分子结构第18页
      1.2.3.3 IL-34的表达第18-19页
      1.2.3.4 IL-34的受体第19页
      1.2.3.5 IL-34的生物学活性第19页
  1.3 本研究的目的及意义第19-20页
2 材料与方法第20-31页
  2.1 材料第20页
    2.1.1 病毒、细胞及动物第20页
    2.1.2 实验材料与试剂第20页
    2.1.3 实验仪器与耗材第20页
  2.2 体内试验方法第20-26页
    2.2.1 C6/36细胞的培养第20-21页
    2.2.2 病毒的培养及滴度的测定第21-22页
    2.2.3 LD50的测定第22页
    2.2.4 JEV感染小鼠病理组织切片第22-25页
      2.2.4.1 小鼠脑组织石蜡切片的制作第22-25页
      2.2.4.2 鼠脑石蜡切片HE染色第25页
    2.2.5 JEV感染小鼠模型的建立第25-26页
    2.2.6 JEV感染小鼠脑内病毒滴度的测定第26页
  2.3 体外试验方法第26-31页
    2.3.1 BHK21细胞的培养及冻存第26-27页
    2.3.2 JEV在BHK21细胞上的复制情况第27-28页
      2.3.2.1 JEV感染BHK21细胞上清TCID50实验第27-28页
    2.3.3 JEV在N2a上的复制情况第28-30页
      2.3.3.1 JEV感染N2a细胞上清TCID50实验第28页
      2.3.3.2 实时定量PCR试验第28-30页
    2.3.4 JEV感染BV2细胞系模型的建立第30-31页
      2.3.4.1 BV2细胞的培养第30-31页
      2.3.4.2 JEV感染BV2细胞第31页
      2.3.4.3 JEV感染BV2细胞上清TCID50实验第31页
3 结果第31-37页
  3.1 NJ-2008株、SH-01株、SA14142 株感染小鼠LD50测定情况第31-32页
  3.2 发病小鼠神经症状表现第32-33页
  3.3 鼠脑组织切片第33页
  3.4 IL-34能明显促进乙脑感染的进程并缩短小鼠生存时间第33-34页
  3.5 IL-34能明显促进JEV在小鼠脑内的复制第34-35页
  3.6 JEV在BHK21细胞上的生长特性分析第35页
    3.6.1 JEV感染BHK21细胞上清病毒滴度的测定第35页
  3.7 JEV在N2a细胞上的生长特性分析第35-36页
    3.7.1 JEV感染N2a细胞上清病毒滴度的测定第35-36页
    3.7.2 实时定量PCR法检测JEV感染的N2a细胞内JEV基因的表达量第36页
  3.8 IL-34能明显促进JEV在BV2细胞上的复制第36-37页
4 讨论第37-39页
5 结论第39-40页
参考文献第40-45页
致谢第45-46页
个人简介第46-47页
攻读硕士学位期间发表论文情况第47页

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