论文目录 | |
中文摘要 | 第11-11页 |
Abstract | 第11-12页 |
1 前言 | 第12-20页 |
1.1 日本乙型脑炎 | 第12-16页 |
1.1.1 乙型脑炎概述 | 第12-13页 |
1.1.2 乙型脑炎病毒的遗传多样性 | 第13-14页 |
1.1.3 乙型脑炎病毒的基因结构 | 第14页 |
1.1.4 乙型脑炎的传播 | 第14-15页 |
1.1.5 乙型脑炎的临床表现 | 第15页 |
1.1.6 乙型脑炎的预防 | 第15-16页 |
1.2 白细胞介素 | 第16-19页 |
1.2.1 白细胞介素概述 | 第16页 |
1.2.2 参与调节免疫的白介素 | 第16-18页 |
1.2.2.1 白细胞介素 1(IL-1) | 第16-17页 |
1.2.2.2 白细胞介素 2(IL-2) | 第17页 |
1.2.2.3 白细胞介素 5(IL-5) | 第17页 |
1.2.2.4 白细胞介素 6(IL-6) | 第17页 |
1.2.2.5 白细胞介素 10(IL-10) | 第17页 |
1.2.2.6 白细胞介素 12(IL-12) | 第17-18页 |
1.2.3 白细胞介素 34(IL-34) | 第18-19页 |
1.2.3.1 IL-34的发现 | 第18页 |
1.2.3.2 IL-34的分子结构 | 第18页 |
1.2.3.3 IL-34的表达 | 第18-19页 |
1.2.3.4 IL-34的受体 | 第19页 |
1.2.3.5 IL-34的生物学活性 | 第19页 |
1.3 本研究的目的及意义 | 第19-20页 |
2 材料与方法 | 第20-31页 |
2.1 材料 | 第20页 |
2.1.1 病毒、细胞及动物 | 第20页 |
2.1.2 实验材料与试剂 | 第20页 |
2.1.3 实验仪器与耗材 | 第20页 |
2.2 体内试验方法 | 第20-26页 |
2.2.1 C6/36细胞的培养 | 第20-21页 |
2.2.2 病毒的培养及滴度的测定 | 第21-22页 |
2.2.3 LD50的测定 | 第22页 |
2.2.4 JEV感染小鼠病理组织切片 | 第22-25页 |
2.2.4.1 小鼠脑组织石蜡切片的制作 | 第22-25页 |
2.2.4.2 鼠脑石蜡切片HE染色 | 第25页 |
2.2.5 JEV感染小鼠模型的建立 | 第25-26页 |
2.2.6 JEV感染小鼠脑内病毒滴度的测定 | 第26页 |
2.3 体外试验方法 | 第26-31页 |
2.3.1 BHK21细胞的培养及冻存 | 第26-27页 |
2.3.2 JEV在BHK21细胞上的复制情况 | 第27-28页 |
2.3.2.1 JEV感染BHK21细胞上清TCID50实验 | 第27-28页 |
2.3.3 JEV在N2a上的复制情况 | 第28-30页 |
2.3.3.1 JEV感染N2a细胞上清TCID50实验 | 第28页 |
2.3.3.2 实时定量PCR试验 | 第28-30页 |
2.3.4 JEV感染BV2细胞系模型的建立 | 第30-31页 |
2.3.4.1 BV2细胞的培养 | 第30-31页 |
2.3.4.2 JEV感染BV2细胞 | 第31页 |
2.3.4.3 JEV感染BV2细胞上清TCID50实验 | 第31页 |
3 结果 | 第31-37页 |
3.1 NJ-2008株、SH-01株、SA14142 株感染小鼠LD50测定情况 | 第31-32页 |
3.2 发病小鼠神经症状表现 | 第32-33页 |
3.3 鼠脑组织切片 | 第33页 |
3.4 IL-34能明显促进乙脑感染的进程并缩短小鼠生存时间 | 第33-34页 |
3.5 IL-34能明显促进JEV在小鼠脑内的复制 | 第34-35页 |
3.6 JEV在BHK21细胞上的生长特性分析 | 第35页 |
3.6.1 JEV感染BHK21细胞上清病毒滴度的测定 | 第35页 |
3.7 JEV在N2a细胞上的生长特性分析 | 第35-36页 |
3.7.1 JEV感染N2a细胞上清病毒滴度的测定 | 第35-36页 |
3.7.2 实时定量PCR法检测JEV感染的N2a细胞内JEV基因的表达量 | 第36页 |
3.8 IL-34能明显促进JEV在BV2细胞上的复制 | 第36-37页 |
4 讨论 | 第37-39页 |
5 结论 | 第39-40页 |
参考文献 | 第40-45页 |
致谢 | 第45-46页 |
个人简介 | 第46-47页 |
攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第47页 |