褐牙鲆干扰素调节因子3（IRF-3）和干扰素调节因子7（IRF-7）的全长cDNA克隆与表达分析 |
论文目录 | | | 摘要 | 第1-7
页 | | Abstract | 第7-13
页 | | 第一章 文献综述 | 第13-31
页 | | 1 鱼类干扰素系统的研究进展 | 第13-20
页 | | · 鱼类干扰素的发现及其作用 | 第13-15
页 | | · 鱼类干扰素分子的分类及结构 | 第15-16
页 | | · 鱼类干扰素的作用机理 | 第16-19
页 | | · 鱼类干扰素诱导蛋白 | 第19-20
页 | | 2 鱼类干扰素调节因子家族的研究进展 | 第20-29
页 | | · 鱼类干扰素调节因子的分类及分子结构 | 第21
页 | | · 鱼类干扰素调节因子的作用 | 第21-23
页 | | · 鱼类IRF-3和IRF-7的研究进展 | 第23-29
页 | | 3 本项研究的目的与意义 | 第29-31
页 | | 第二章 褐牙鲆IRF-3和IRF-7全长cDNA克隆和序列分析 | 第31-66
页 | | 1 实验材料 | 第31-33
页 | | · 实验动物、菌种及质粒 | 第31
页 | | · 主要设备与仪器 | 第31-32
页 | | · 主要试剂及溶液配制 | 第32-33
页 | | 2 实验方法 | 第33-39
页 | | · 褐牙鲆组织的获取 | 第33
页 | | · 总RNA的提取及质量检测 | 第33-34
页 | | · cDNA第一链的合成 | 第34
页 | | · 核心片段的克隆及测序 | 第34-37
页 | | · 3'RACE和5'RACE片段的克隆及测序 | 第37-38
页 | | · 全长序列的克隆及测序 | 第38-39
页 | | · 序列分析与进化树的构建 | 第39
页 | | 3 结果分析 | 第39-63
页 | | · RNA样品的制备与质量检测 | 第39-40
页 | | · 核心片段的克隆及测序结果 | 第40-44
页 | | · 3'RACE片段的克隆及测序结果 | 第44-47
页 | | · 5'RACE片段的克隆及测序结果 | 第47-50
页 | | · 全长序列的克隆及测序结果 | 第50-53
页 | | · IRF-3和IRF-7基因cDNA的序列分析 | 第53-63
页 | | 4 讨论 | 第63-66
页 | | 第三章 褐牙鲆IRF-3和IRF-7基因的表达分析 | 第66-81
页 | | 1 褐牙鲆IRF-3和IRF-7 mRNA的组织分布研究 | 第66-68
页 | | · 实验材料 | 第66
页 | | · 实验方法 | 第66-67
页 | | · 褐牙鲆各组织的获取 | 第66
页 | | · 引物设计 | 第66-67
页 | | · 总RNA的提取 | 第67
页 | | · cDNA的合成 | 第67
页 | | · RT-PCR分析 | 第67
页 | | · 结果分析 | 第67-68
页 | | 2 PolyI:C刺激和病毒感染对IRF-3,IRF-7,IFN-I,IFN-γ,Mx基因的表达影响研究 | 第68-78
页 | | · 实验材料 | 第69-70
页 | | · 实验动物、细胞系及病毒株 | 第69
页 | | · 主要仪器与设备 | 第69
页 | | · 主要试剂及溶液配制 | 第69-70
页 | | · 实验方法 | 第70-73
页 | | · PolyI:C刺激和LCDV感染牙鲆细胞 | 第70-71
页 | | · LCDV感染牙鲆鱼体 | 第71
页 | | · 总RNA的提取 | 第71
页 | | · cDNA的合成 | 第71-72
页 | | · Real-time PCR | 第72-73
页 | | · 结果分析 | 第73-78
页 | | · PolyI:C刺激牙鲆细胞后IRF-3,IRF-7,IFN-I,IFN-γ,Mx基因的表达 | 第73-74
页 | | · LCDV感染牙鲆细胞后IRF-3,IRF-7,IFN-I,IFN-γ,Mx基因的表达 | 第74-76
页 | | · LCDV感染褐牙鲆后IRF-3,IRF-7,IFN-I,IFN-γ,Mx基因的表达 | 第76-78
页 | | 3 讨论 | 第78-81
页 | | 结论 | 第81-82
页 | | 参考文献 | 第82-92
页 | | 致谢 | 第92-93
页 | | 发表的学术论文 | 第93
页 |
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