论文目录 | |
中文摘要 | 第1-12页 |
Abstract | 第12-14页 |
第一章 引言 | 第15-21页 |
1.1 氧化应激的产生及危害 | 第15页 |
1.2 南瓜多糖、人参皂苷、芦丁及其主要生理活性研究进展 | 第15-19页 |
1.2.1 多糖与南瓜多糖的研究进展 | 第15-16页 |
1.2.2 多糖的分离、纯化及结构解析 | 第16-18页 |
1.2.3 南瓜多糖的抗氧化研究 | 第18页 |
1.2.4 人参与人参皂苷的研究现状 | 第18-19页 |
1.2.5 芦丁的研究进展 | 第19页 |
1.3 天然活性成分联合作用 | 第19-20页 |
1.4 本研究的目的及意义 | 第20-21页 |
第二章 南瓜多糖的纯化及结构鉴定 | 第21-30页 |
2.1 材料与方法 | 第21-24页 |
2.1.1 实验材料 | 第21页 |
2.1.2 实验仪器 | 第21-24页 |
2.2 结果与分析 | 第24-28页 |
2.2.1 DEAE-52 离子交换层析 | 第24-25页 |
2.2.2 Sephadex G-200 层析 | 第25页 |
2.2.3 南瓜多糖分子量测定 | 第25-26页 |
2.2.4 南瓜多糖的单糖组成分析 | 第26-27页 |
2.2.5 紫外可见光谱分析 | 第27页 |
2.2.6 远红外光谱分析 | 第27-28页 |
2.3 讨论 | 第28页 |
2.4 小结 | 第28-30页 |
第三章 南瓜多糖和人参皂苷Rg1或芦丁的体外抗氧化研究 | 第30-39页 |
3.1 材料和方法 | 第30页 |
3.1.1 材料与试剂 | 第30页 |
3.1.2 主要仪器 | 第30页 |
3.2 试验方法 | 第30-31页 |
3.2.1 抗氧化活性的测定 | 第30-31页 |
3.2.2 统计方法 | 第31页 |
3.3 结果与分析 | 第31-37页 |
3.3.1 清除DPPH自由基的效果 | 第31-33页 |
3.3.2 清除羟基自由基的效果 | 第33-35页 |
3.3.3 抑制脂质过氧化的效果 | 第35-37页 |
3.4 讨论 | 第37-38页 |
3.4.1 南瓜多糖、芦丁、人参皂苷Rg1 的抗氧化效果 | 第37页 |
3.4.2 南瓜多糖、芦丁、人参皂苷Rg1 复配物的抗氧化效果 | 第37-38页 |
3.4.3 南瓜多糖的结构与抗氧化能力 | 第38页 |
3.5 小结 | 第38-39页 |
第四章 基于肝细胞氧化应激损伤模型的南瓜多糖与人参皂苷Rg1联合抗氧化作用研究 | 第39-53页 |
4.1 材料与方法 | 第39-43页 |
4.1.1 实验材料 | 第39页 |
4.1.2 实验仪器 | 第39页 |
4.1.3 实验方法 | 第39-43页 |
4.1.4 统计分析 | 第43页 |
4.2 结果与分析 | 第43-50页 |
4.2.1 南瓜多糖、人参皂苷Rg1 及混合物扫描电镜观察 | 第43-45页 |
4.2.2 诱导小鼠肝细胞损伤所需 H_2O_2 浓度的确定 | 第45-46页 |
4.2.3 南瓜多糖和人参皂苷Rg1 以及联合组对细胞模型活力的修复作用 | 第46-47页 |
4.2.4 南瓜多糖和人参皂苷Rg1 以及联合对细胞模型MDA的影响 | 第47-48页 |
4.2.5 南瓜多糖和人参皂苷Rg1 以及联合对细胞模型GSH-Px的影响 | 第48-49页 |
4.2.6 南瓜多糖和人参皂苷Rg1 以及联合对细胞模型SOD的影响 | 第49-50页 |
4.2.7 南瓜多糖和人参皂苷Rg1 以及联合对细胞模型CAT的影响 | 第50页 |
4.3 讨论 | 第50-52页 |
4.3.1 南瓜多糖的形态结构及与人参皂苷Rg1 混合后结构的变化 | 第50-51页 |
4.3.2 两种活性成分单独与联合对H_2O_2氧化应激损伤细胞模型活力的影响 | 第51页 |
4.3.3 两种活性物质单独与联合对H_2O_2损伤细胞培养液中抗氧化酶类的影响 | 第51页 |
4.3.4 两种活性物质单独与联合对H_2O_2致损伤肝细胞培养液中丙二醛的影响 | 第51-52页 |
4.4 小结 | 第52-53页 |
结论 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-60页 |
致谢 | 第60-61页 |
攻读学位期间发表的论文 | 第61页 |