论文目录 | |
中文摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-9页 |
英文缩略词表 | 第9-11页 |
前言 | 第11-14页 |
研究流程图 | 第14-15页 |
第一部分 :黄芩苷与TRAIL联合应用促进肺癌细胞的凋亡 | 第15-46页 |
材料和方法 | 第15-26页 |
1.材料 | 第15-18页 |
1.1 实验细胞株 | 第15页 |
1.2 实验药品 | 第15-16页 |
1.3 实验材料 | 第16页 |
1.4 实验试剂 | 第16-17页 |
1.5 抗体 | 第17页 |
1.6 实验仪器 | 第17-18页 |
2.方法 | 第18-26页 |
2.1 细胞培养 | 第18-19页 |
2.2 显微镜观察细胞形态 | 第19-20页 |
2.3 细胞死亡率的测定—乳酸脱氢酶(LDH)释放实验 | 第20-21页 |
2.4 流式细胞仪检测细胞凋亡(Flow cytometric apoptosis analysis) | 第21-22页 |
2.5 免疫蛋白印迹技术(Western Blot) | 第22-26页 |
2.6 统计学方法 | 第26页 |
实验结果 | 第26-38页 |
1.倒置相差显微镜下观察A549细胞中黄芩苷对TRAIL诱导的细胞死亡的增敏作用 | 第26-27页 |
2.乳酸脱氢酶释放实验检测A549细胞中黄芩苷对TRAIL诱导的细胞死亡的增敏作用 | 第27-30页 |
3.乳酸脱氢酶释放实验检测H2009细胞中黄芩苷对TRAIL诱导的细胞死亡的增敏作用 | 第30-34页 |
4.流式细胞术检测A549中黄芩苷与TRAIL单药或合药诱导的细胞凋亡 | 第34-35页 |
5.Western Blot检测黄芩苷与TRAIL合用诱导A549细胞内凋亡信号通路活化情况 | 第35-37页 |
6.A549细胞中,黄芩苷增敏TRAIL杀肺癌细胞作用可被凋亡抑制剂所抑制 | 第37-38页 |
小结 | 第38-39页 |
讨论 | 第39-46页 |
一.黄芩苷的抗肿瘤作用 | 第39-43页 |
1.单独使用黄芩苷抗肿瘤作用 | 第39-41页 |
2.与其他药物联合治疗肿瘤 | 第41-43页 |
二.TRAIL对肿瘤细胞的影响 | 第43-46页 |
第二部分 :黄芩苷促进TRAIL诱导的细胞凋亡主要通过激活P38信号通路和ROS信号通路 | 第46-71页 |
材料和方法 | 第46-57页 |
1.实验材料 | 第46-49页 |
1.1 实验细胞株 | 第46页 |
1.2 实验药品 | 第46-47页 |
1.3 实验材料 | 第47页 |
1.4 实验试剂 | 第47-48页 |
1.5 抗体 | 第48页 |
1.6 实验仪器 | 第48-49页 |
2.实验方法 | 第49-57页 |
2.1 细胞培养 | 第49-51页 |
2.2 显微镜观察细胞形态 | 第51页 |
2.3 细胞死亡率的测定—乳酸脱氢酶(LDH)释放实验 | 第51-52页 |
2.4 免疫蛋白印迹技术(Western Blot) | 第52-56页 |
2.5 活性氧的检测(Detection of ROS) | 第56-57页 |
2.6 统计学方法 | 第57页 |
实验结果 | 第57-66页 |
1.黄芩苷增敏TRAIL对肺癌细胞的杀伤作用与P38信号通路激活相关 | 第57-61页 |
1.1 通过P38信号通路研究黄芩苷增敏TRAIL对肺癌细胞的杀伤作用 | 第57-59页 |
1.2 通过Western blot检测黄芩苷及TRAIL联合作用后肺癌细胞中P-p38表达情况 | 第59-61页 |
2.黄芩苷增敏TRAIL对肺癌细胞的杀伤作用与ROS信号通路激活相关 | 第61-66页 |
2.1 通过ROS信号通路研究黄芩苷增敏TRAIL对肺癌细胞的杀伤作用 | 第61-63页 |
2.2 检测肺癌A549细胞内ROS的表达水平 | 第63-66页 |
小结 | 第66-67页 |
讨论 | 第67-71页 |
结论 | 第71-72页 |
致谢 | 第72-73页 |
参考文献 | 第73-81页 |
附件1 文献综述 | 第81-88页 |
参考文献 | 第85-88页 |
附件2 硕士研究生在读期间论文发表情况 | 第88-89页 |