论文目录 | |
摘要 | 第1-8页 |
Abstract | 第8-9页 |
缩略语表 ( Abbreviation ) | 第9-10页 |
1 文献综述 | 第10-20页 |
1.1 狂犬病简介 | 第10页 |
1.2 狂犬病病原学 | 第10-11页 |
1.3 狂犬病病毒的致病机制和病理变化 | 第11-12页 |
1.4 狂犬病的流行病学 | 第12-13页 |
1.5 狂犬病的诊断和防控 | 第13-14页 |
1.6 病毒转运途径 | 第14-16页 |
1.6.1 溶酶体功能 | 第15页 |
1.6.2 溶酶体功能分子 | 第15-16页 |
1.7 小胶质细胞的吞噬功能 | 第16页 |
1.8 胶质细胞与神经元的互作 | 第16-18页 |
1.8.1 CX3CR1/CX3CL1分子 | 第17-18页 |
1.8.2 CD200R/CD200分子 | 第18页 |
1.8.3 CD172?/CD47分子 | 第18页 |
1.9 小胶质细胞活化 | 第18-19页 |
1.10 小胶质细胞分型 | 第19-20页 |
1.10.1 M1型小胶质细胞 | 第19页 |
1.10.2 M2型小胶质细胞 | 第19-20页 |
2 目的与意义 | 第20-21页 |
3 实验材料与方法 | 第21-33页 |
3.1 实验材料 | 第21-23页 |
3.1.1 细胞与病毒 | 第21页 |
3.1.2 主要药品和试剂 | 第21-22页 |
3.1.3 培养基及其配制 | 第22页 |
3.1.4 相关试剂及配制 | 第22页 |
3.1.5 实验动物 | 第22-23页 |
3.1.6 重要仪器及设备 | 第23页 |
3.2 实验方法 | 第23-33页 |
3.2.1 细胞的复苏和培养 | 第23-24页 |
3.2.2 固定毒株B2C的扩增与滴定 | 第24-25页 |
3.2.3 野毒株AH08和SX15的扩增与滴定 | 第25页 |
3.2.4 原代混合胶质细胞的培养及小胶质细胞分离 | 第25-27页 |
3.2.5 B2C、AH08、SX15感染胶质细胞 | 第27页 |
3.2.6 细胞表面染色 | 第27页 |
3.2.7 细胞间接免疫荧光 | 第27-28页 |
3.2.8 免疫组化 | 第28页 |
3.2.9 RNA的提取 | 第28-29页 |
3.2.10 反转录PCR | 第29-30页 |
3.2.11 荧光定量PCR | 第30页 |
3.2.12 蛋白样品的制备 | 第30-31页 |
3.2.13 Western blot | 第31页 |
3.2.14 流式数据分析 | 第31-32页 |
3.2.15 数据统计分析 | 第32页 |
3.2.16 手术器械消毒 | 第32页 |
3.2.17 实验动物及废物无害化处理 | 第32-33页 |
4 结果与分析 | 第33-44页 |
4.1 荧光灶实验检测B2C、AH08、SX15的毒价 | 第33页 |
4.2 原代胶质细胞培养及小胶质细胞的分离 | 第33-34页 |
4.3 病毒量检测 | 第34-35页 |
4.4 不同狂犬病病毒毒株与溶酶体的共定位 | 第35-36页 |
4.5 病毒感染对LAMP1、LAMP2、cathepsin D的影响 | 第36-37页 |
4.6 不同狂犬病病毒与小胶质细胞共定位 | 第37-38页 |
4.7 病毒感染后小胶质细胞的活化 | 第38-40页 |
4.8 小胶质细胞的分型 | 第40-42页 |
4.9 小胶质细胞与神经元的互作表面分子变化 | 第42-44页 |
5 讨论 | 第44-48页 |
5.1 狂犬病病毒固定毒株与野毒株感染胶质细胞后病毒量的变化 | 第44页 |
5.2 狂犬病病毒固定毒能够定位到溶酶体 | 第44-45页 |
5.3 不同病毒感染溶酶体功能分子的变化 | 第45页 |
5.4 狂犬病病毒固定毒能够感染小胶质细胞 | 第45-46页 |
5.5 狂犬病病毒野毒株能够抑制小胶质细胞的活化 | 第46页 |
5.6 狂犬病病毒野毒株影响小胶质细胞的分型 | 第46页 |
5.7 狂犬病病毒野毒株能够上调小胶质细胞与神经元互作的抑制性分子的表达 | 第46-48页 |
6 结论 | 第48-49页 |
参考文献 | 第49-54页 |
致谢 | 第54页 |