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内切菊粉酶的定向制备及酶法生产低聚果糖的研究

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内切菊粉酶的定向制备及酶法生产低聚果糖的研究
论文目录
 
致谢第1-4页
摘要第4-5页
abstract第5-10页
第一章 前言第10-11页
第二章 文献综述第11-20页
  2.1 菊粉第11-12页
    2.1.1 菊粉的概述第11页
    2.1.2 菊粉的化学结构第11页
    2.1.3 菊粉的理化性质第11-12页
    2.1.4 菊粉的来源第12页
  2.2 菊粉酶的研究现状第12-17页
    2.2.1 菊粉酶的分类第13页
    2.2.2 菊粉酶的生产菌株和酶学性质第13-15页
    2.2.3 微生物发酵法生产菊粉酶第15-17页
      2.2.3.1 产菊粉酶菌株的筛选第15页
      2.2.3.2 发酵条件对微生物菌株产菊粉酶的影响第15-17页
  2.3 菊粉酶的应用第17-18页
    2.3.1 利用菊粉酶制备高果糖浆第17页
    2.3.2 利用菊粉酶制备酒精第17-18页
    2.3.3 利用菊粉酶制备低聚果糖第18页
  2.4 目前酶水解法制备低聚果糖存在的问题第18-19页
  2.5 本论文主要研究目的与内容第19-20页
第三章 产菊粉酶微生物菌株的筛选与鉴定第20-30页
  3.1 引言第20页
  3.2 材料与方法第20-25页
    3.2.1 样品来源第20页
    3.2.2 实验试剂第20-21页
    3.2.3 实验设备第21页
    3.2.4 培养基第21-22页
      3.2.4.1 初筛培养基第21页
      3.2.4.2 PDA分离纯化培养基第21-22页
      3.2.4.3 种子培养基第22页
      3.2.4.4 复筛培养基第22页
      3.2.4.5 斜面保藏培养基第22页
    3.2.5 筛选方法第22页
      3.2.5.1 初筛第22页
      3.2.5.2 复筛第22页
    3.2.6 菊粉酶活力的测定第22-24页
      3.2.6.1 DNS试剂(3,5-二硝基水杨酸试剂)的配制第22-23页
      3.2.6.2 乙酸-乙酸钠缓冲液的配制第23页
      3.2.6.3 果糖标准曲线的测定第23页
      3.2.6.4 内切菊粉酶活力的测定第23页
      3.2.6.5 外切菊粉酶活力的测定第23-24页
    3.2.7 菌种鉴定第24-25页
      3.2.7.1 点种观察第24页
      3.2.7.2 电镜扫描第24页
      3.2.7.3 分子生物学鉴定第24-25页
  3.3 结果与讨论第25-28页
    3.3.1 产菊粉酶菌株的筛选第25-26页
      3.3.1.1 产菊粉酶菌株的初筛第25页
      3.3.1.2 产菊粉酶菌株的复筛第25-26页
    3.3.2 产菊粉酶菌株的鉴定第26-28页
      3.3.2.1 真菌Z421的形态特征第26-27页
      3.3.2.2 ITS-rDNA序列鉴定第27-28页
  3.4 本章小结第28-29页
附录 1第29-30页
第四章 黑曲霉Aspergillus niger Z421产菊粉酶发酵条件的优化第30-40页
  4.1 引言第30页
  4.2 材料与方法第30-32页
    4.2.1 菌株第30页
    4.2.2 实验试剂第30页
    4.2.3 实验仪器第30页
    4.2.4 培养基第30-31页
      4.2.4.1 种子培养基第30页
      4.2.4.2 发酵产酶培养基第30页
      4.2.4.3 斜面保藏培养基第30-31页
    4.2.5 单因素实验优化微生物产菊粉酶的条件第31页
      4.2.5.1 碳源种类对微生物产菊粉酶的影响第31页
      4.2.5.2 氮源种类对微生物产菊粉酶的影响第31页
      4.2.5.3 无机盐或金属离子对微生物产菊粉酶的影响第31页
      4.2.5.4 产酶时间对微生物产菊粉酶的影响第31页
      4.2.5.5 不同氮源浓度对微生物产菊粉酶的影响第31页
    4.2.6 菊粉酶活力的测定第31-32页
  4.3 结果与讨论第32-39页
    4.3.1 碳源种类对微生物产菊粉酶的影响第32-33页
    4.3.2 氮源种类对微生物产菊粉酶的影响第33-35页
    4.3.3 无机盐或金属离子对微生物产菊粉酶的影响第35-36页
    4.3.4 不同氮源浓度对微生物产菊粉酶的影响第36-38页
    4.3.5 产酶时间对微生物产菊粉酶的影响第38-39页
  4.4 本章小结第39-40页
第五章 天然菊粉酶的定向拆分及酶解制备低聚果糖第40-54页
  5.1 引言第40页
  5.2 材料与方法第40-44页
    5.2.1 菌株第40页
    5.2.2 原料第40页
    5.2.3 实验试剂第40-42页
    5.2.4 实验设备第42页
    5.2.5 培养基第42页
      5.2.5.1 种子培养基第42页
      5.2.5.2 发酵产酶培养基第42页
    5.2.6 培养方法第42页
    5.2.7 菊芋渣对菊粉酶的吸附实验第42-43页
    5.2.8 菊粉酶活力的测定第43页
    5.2.9 低聚果糖的酶法制备第43页
    5.2.10 单因素实验优化酶法制备低聚果糖的条件第43-44页
      5.2.10.1 温度对低聚果糖含量的影响第43页
      5.2.10.2 底物浓度对低聚果糖含量的影响第43-44页
      5.2.10.3 酶用量对低聚果糖含量的影响第44页
      5.2.10.4 酶解时间对低聚果糖含量的影响第44页
    5.2.11 低聚果糖、果糖、葡萄糖、蔗糖的定量检测第44页
  5.3 结果与讨论第44-52页
    5.3.1 天然菊粉酶的定向拆分制备第44-49页
      5.3.1.1 吸附时间对菊粉酶组分定向拆分的影响第45-46页
      5.3.1.2 底物浓度对菊粉酶组分定向拆分的影响第46页
      5.3.1.3 pH值对菊粉酶组分定向拆分的影响第46-47页
      5.3.1.4 温度对菊粉酶组分定向拆分的影响第47-48页
      5.3.1.5 定向拆分前后菊粉酶组分的变化第48-49页
    5.3.2 酶法制备低聚果糖第49-52页
      5.3.2.1 温度对低聚果糖含量的影响第49页
      5.3.2.2 底物浓度对低聚果糖含量的影响第49-50页
      5.3.2.3 酶用量对低聚果糖含量的影响第50-51页
      5.3.2.4 酶解时间对低聚果糖含量的影响第51-52页
      5.3.2.5 定向拆分前后菊粉酶酶解制备低聚果糖的对比第52页
  5.4 本章小节第52-54页
第六章 结论与展望第54-55页
  6.1 结论第54页
  6.2 创新与展望第54-55页
攻读学位期间发表的论文第55-56页
参考文献第56-60页

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