论文目录 | |
摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
缩略词注释 | 第9-10页 |
第1章 文献综述 | 第10-15页 |
1.1 卵转铁蛋白及其酶解物的研究现状 | 第10-11页 |
1.1.1 卵转铁蛋白的结构和生物活性 | 第10页 |
1.1.2 卵转铁蛋白的免疫调节功能 | 第10-11页 |
1.1.3 卵转铁蛋白来源的酶解物生物活性 | 第11页 |
1.2 树突状细胞研究现状 | 第11-14页 |
1.2.1 DCs的分布与来源 | 第12页 |
1.2.2 DCs的成熟机制 | 第12页 |
1.2.3 DCs的免疫调节作用 | 第12-13页 |
1.2.4 DCs信号转导机制 | 第13-14页 |
1.3 课题来源及研究目的与意义 | 第14-15页 |
1.3.1 课题来源 | 第14页 |
1.3.2 研究目的与意义 | 第14-15页 |
第2章 卵转铁蛋白酶解物对树突状细胞表型的影响 | 第15-24页 |
2.1 试验材料和仪器 | 第15-16页 |
2.1.1 主要试验材料 | 第15-16页 |
2.1.2 主要仪器设备 | 第16页 |
2.2 试验方法 | 第16-18页 |
2.2.1 主要试剂配制 | 第16页 |
2.2.2 卵转铁蛋白酶解物的制备 | 第16页 |
2.2.3 小鼠骨髓源DCs的分离和培养 | 第16-17页 |
2.2.4 卵转铁蛋白酶解物对DCs的细胞毒性试验 | 第17页 |
2.2.5 卵转铁蛋白酶解物对DCs表型分子表达的影响 | 第17-18页 |
2.2.6 统计学分析 | 第18页 |
2.3 结果 | 第18-22页 |
2.3.1 卵转铁蛋白酶解物对DCs的毒性作用 | 第18页 |
2.3.2 卵转铁蛋白酶解物对DCs形态的影响 | 第18-20页 |
2.3.3 卵转铁蛋白酶解物对DCs表型分子表达的影响 | 第20-22页 |
2.4 讨论 | 第22-23页 |
2.5 小结 | 第23-24页 |
第3章 卵转铁蛋白酶解物对树突状细胞功能的影响 | 第24-35页 |
3.1 试验材料与设备 | 第24-25页 |
3.1.1 主要试验材料 | 第24页 |
3.1.2 主要仪器设备 | 第24-25页 |
3.2 试验方法 | 第25-27页 |
3.2.1 小鼠骨髓源DCs的分离和培养 | 第25页 |
3.2.2 ELISA法检测DCs细胞上清液中细胞因子和趋化因子 | 第25页 |
3.2.3 小鼠脾脏淋巴细胞的分离 | 第25-26页 |
3.2.4 成熟DCs引发混合淋巴细胞反应(MLRs) | 第26页 |
3.2.5 同种异体DC、T细胞混合培养上清中lFN-γ 和l L-4 的检测 | 第26页 |
3.2.6 统计学分析 | 第26-27页 |
3.3 结果 | 第27-33页 |
3.3.1 卵转铁蛋白酶解物对DCs分泌细胞因子和趋化因子的影响 | 第27-31页 |
3.3.2 卵转铁蛋白酶解物对DCs诱导T淋巴细胞增殖能力的影响 | 第31-32页 |
3.3.3 卵转铁蛋白酶解物对MLR反应上清液细胞因子的影响 | 第32-33页 |
3.4 讨论 | 第33-34页 |
3.5 小结 | 第34-35页 |
第4章 卵转铁蛋白酶解物对树突状细胞MAPK通路的影响 | 第35-44页 |
4.1 试验材料与设备 | 第35-36页 |
4.1.1 主要试验材料 | 第35-36页 |
4.1.2 主要仪器设备 | 第36页 |
4.2 试验方法 | 第36-38页 |
4.2.1 试验试剂配制 | 第36页 |
4.2.2 成熟DCs蛋白的提取 | 第36-37页 |
4.2.3 蛋白含量的测定 | 第37页 |
4.2.4 蛋白变性 | 第37页 |
4.2.5 SDS-PAGE凝胶电泳 | 第37页 |
4.2.6 转膜 | 第37-38页 |
4.2.7 封闭 | 第38页 |
4.2.8 免疫显影 | 第38页 |
4.2.9 凝胶成像分析及数据分析 | 第38页 |
4.3 结果 | 第38-41页 |
4.3.1 卵转铁蛋白酶解物对LPS诱导的DCs p38MAPK活化的影响 | 第38-39页 |
4.3.2 卵转铁蛋白酶解物对LPS诱导的DCs JNK活化的影响 | 第39-40页 |
4.3.3 卵转铁蛋白酶解物对LPS诱导DCs ERK活化的影响 | 第40-41页 |
4.4 讨论 | 第41-43页 |
4.5 小结 | 第43-44页 |
结论与展望 | 第44-45页 |
1 结论 | 第44页 |
2 展望 | 第44-45页 |
参考文献 | 第45-50页 |
致谢 | 第50-51页 |
在校期间已发表文章 | 第51页 |