论文目录 | |
| 中文摘要 | 第1-6页 |
| 英文摘要 | 第6-13页 |
| 符号说明 | 第13-15页 |
| 第一部分: 小鼠卵巢组织玻璃化冷冻的效果评估 | 第15-25页 |
| 前言 | 第15-16页 |
| 材料与试剂 | 第16-18页 |
| 1. 实验动物 | 第16页 |
| 2. 主要实验设备 | 第16页 |
| 3. 主要实验试剂 | 第16-17页 |
| 4. 主要实验试剂配制 | 第17-18页 |
| 实验方法与步骤 | 第18-21页 |
| 1. 小鼠卵巢组织获取及分组方法 | 第18页 |
| 2. 卵巢组织玻璃化冷冻 | 第18页 |
| 3. 石蜡切片制作和HE染色 | 第18-19页 |
| 4. 免疫组织化学染色Ki67 | 第19-20页 |
| 5. 玻璃化冷冻解冻的TUNEL检测 | 第20页 |
| 6. 统计学分析 | 第20-21页 |
| 实验结果 | 第21-23页 |
| 1. 卵巢组织玻璃化冷冻解冻后形态学观察 | 第21-22页 |
| 2. 卵巢组织玻璃化冷冻解冻后ki67的表达情况 | 第22页 |
| 3. TUNEL检测卵巢组织玻璃化冷冻解冻后的凋亡情况 | 第22-23页 |
| 讨论 | 第23-25页 |
| 第二部分: 辛伐他汀在冻融小鼠卵巢组织自体移植中的作用 | 第25-36页 |
| 前言 | 第25-26页 |
| 材料与试剂 | 第26-27页 |
| 1. 实验动物 | 第26页 |
| 2. 主要实验设备 | 第26页 |
| 3. 主要实验试剂 | 第26-27页 |
| 4. 主要实验试剂配制 | 第27页 |
| 实验方法与步骤 | 第27-29页 |
| 1. 小鼠分组和卵巢组织移植 | 第27页 |
| 2. 回收移植物和组织学评估 | 第27页 |
| 3. 血清E_2和FSH测定 | 第27-28页 |
| 4. TUNEL检测移植后两组卵巢卵巢组织饿卵泡凋亡情况 | 第28页 |
| 5. 免疫组织化学染色CD34 | 第28页 |
| 6. 卵巢组织中SOD和MDA含量的测定 | 第28-29页 |
| 7. 统计学分析 | 第29页 |
| 实验结果 | 第29-33页 |
| 1. 生理盐水组和辛伐他汀组各级卵泡比较 | 第29-31页 |
| 2. 生理盐水组和辛伐他汀组移植后第3,7,21天血清E_2和FSH表达水平比较 | 第31-32页 |
| 3. 生理盐水组和辛伐他汀组卵巢CD34阳性血管数比较 | 第32-33页 |
| 4. 生理盐水组和辛伐他汀组移植后第3,7天卵巢组织SOD和MDA比较 | 第33页 |
| 讨论 | 第33-36页 |
| 第三部分: 白藜芦醇对冻融小鼠卵巢组织自体移植的效果和机制探索 | 第36-48页 |
| 前言 | 第36-37页 |
| 材料与试剂 | 第37页 |
| 1. 实验动物 | 第37页 |
| 2. 主要实验设备 | 第37页 |
| 3. 主要实验试剂 | 第37页 |
| 4. 主要实验试剂配制 | 第37页 |
| 实验方法与步骤 | 第37-40页 |
| 1. 小鼠分组和卵巢组织移植 | 第37-38页 |
| 2. 回收移植物和组织学评估 | 第38页 |
| 3. 血清E_2和FSH测定 | 第38页 |
| 4. TUNEL检测移植后三组卵巢卵巢组织饿卵泡凋亡情况 | 第38页 |
| 5. qRT-PCR | 第38-40页 |
| 6. 体外卵母细胞成熟培养和体外受精 | 第40页 |
| 7. 统计学分析 | 第40页 |
| 实验结果 | 第40-46页 |
| 1. 生理盐水组、羧甲基纤维素钠组和白藜芦醇组各级卵泡比较 | 第40-43页 |
| 2. 生理盐水组、羧甲基纤维素钠组和白藜芦醇组在移植后第3,7和21天血清E2和FSH表达水平比较 | 第43-44页 |
| 3. 自体移植后的MDA,SOD,NF-κB,SIRT1and IL-6表达 | 第44页 |
| 4. 自体移植后体外卵母细胞成熟培养和体外受精结果 | 第44-46页 |
| 讨论 | 第46-48页 |
| 总结 | 第48-49页 |
| 参考文献 | 第49-56页 |
| 综述 | 第56-65页 |
| 参考文献 | 第62-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第66-67页 |
