论文目录 | |
| 中文摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 符号说明 | 第9-10页 |
| 1. 前言 | 第10-15页 |
| 2. 实验材料 | 第15-19页 |
| 2.1 动物 | 第15页 |
| 2.2 细胞系 | 第15页 |
| 2.3 药品和试剂 | 第15-16页 |
| 2.4 主要仪器 | 第16-17页 |
| 2.5 药品和试剂的配制 | 第17-19页 |
| 3. 实验方法 | 第19-27页 |
| 3.1 动物实验 | 第19-24页 |
| 3.1.1 动物分组及给药 | 第19页 |
| 3.1.2 行为学检测 | 第19-20页 |
| 3.1.3 高效液相-电化学(HPLC-ECD)法检测Str内DA及其代谢产物含量 | 第20页 |
| 3.1.4 脑组织石蜡切片制备 | 第20页 |
| 3.1.5 免疫组织化学法检测TH免疫阳性细胞 | 第20-21页 |
| 3.1.6 TUNEL法检测细胞凋亡 | 第21页 |
| 3.1.7 测定小鼠SN区MDA含量、SOD和GSH-Px活性 | 第21-22页 |
| 3.1.8 Western blotting法检测Cleaved Caspase-3、Bax、 Bcl-2、p38、p-p38、ERK1/2、p-ERK1/2、JNK1/2和p-JNK1/2蛋白的表达 | 第22-24页 |
| 3.2 细胞实验 | 第24-26页 |
| 3.2.1 MPP+制备PD细胞模型 | 第24页 |
| 3.2.2 细胞分组 | 第24页 |
| 3.2.3 MTT法测定细胞存活率 | 第24页 |
| 3.2.4 Hoechst 33258核染色观察细胞凋亡数量 | 第24页 |
| 3.2.5 流式细胞仪分析PC12细胞凋亡率 | 第24-25页 |
| 3.2.6 DCFH-DA荧光探针检测细胞内ROS含量 | 第25页 |
| 3.2.7 Western blotting法测定Cleaved Caspase-3、Bax、Bcl-2、p53、Nrf2、HO-1、Akt和p-Akt蛋白的表达 | 第25页 |
| 3.2.8 加入PI3K抑制剂实验中的细胞分组及检测指标 | 第25-26页 |
| 3.3 统计学处理 | 第26-27页 |
| 4. 实验结果 | 第27-48页 |
| 4.1 Cor对MPTP-PD小鼠DA能神经元凋亡的保护作用及对MAPK信号通路的影响 | 第27-35页 |
| 4.1.1 Cor对PD小鼠DA能神经元的保护作用 | 第27-31页 |
| 4.1.2 Cor抑制PD小鼠DA能神经元凋亡 | 第31-33页 |
| 4.1.3 Cor提高PD小鼠SN区抗氧化能力 | 第33-34页 |
| 4.1.4 Cor抑制MAPK信号通路的激活 | 第34-35页 |
| 4.2 Cor通过激活PI3K/Akt-Nrf2通路抑制MPP~+诱导的PC12细胞氧化应激损伤 | 第35-47页 |
| 4.2.1 PD细胞模型的制备 | 第36页 |
| 4.2.2 Cor提高PD细胞存活率 | 第36-39页 |
| 4.2.3 Cor抑制MPP~+诱导的PC12细胞凋亡 | 第39-41页 |
| 4.2.4 Cor对氧化应激相关的Nrf2通路以及PI3K/Akt通路的影响 | 第41-44页 |
| 4.2.5 加入P13K抑制剂后Cor对PD细胞模型的影响 | 第44-47页 |
| 结果小结 | 第47-48页 |
| 5. 讨论 | 第48-52页 |
| 6. 结论 | 第52页 |
| 参考文献 | 第52-60页 |
| 文献综述 丝裂原活化蛋白激酶信号通路与帕金森病关系的研究进展 | 第60-72页 |
| 参考文献 | 第65-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第73-74页 |
