论文目录 | |
摘要 | 第1-5页 |
ABSTRACT | 第5-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-25页 |
1.1 蜂胶的组成 | 第12-13页 |
1.2 蜂胶的生物活性 | 第13-17页 |
1.2.1 抗菌抗病毒 | 第13-14页 |
1.2.2 抗氧化 | 第14页 |
1.2.3 抗脂肪肝 | 第14-15页 |
1.2.4 抗肿瘤 | 第15页 |
1.2.5 黄酮类化合物作用机理 | 第15-17页 |
1.2.5.1 黄酮类化合物的抗菌机理 | 第16页 |
1.2.5.2 黄酮类化合物的抗氧化机理 | 第16-17页 |
1.3 蜂胶中黄酮类化合物的提取进展 | 第17-19页 |
1.3.1 溶剂浸提法 | 第17页 |
1.3.2 超声波辅助法 | 第17-18页 |
1.3.3 微波辅助法 | 第18页 |
1.3.4 酶辅助法 | 第18-19页 |
1.3.5 表面活性剂辅助法 | 第19页 |
1.4 微乳化溶液 | 第19-24页 |
1.4.1 乳状液 | 第19-20页 |
1.4.1.1 乳状液及其分类 | 第19-20页 |
1.4.1.2 多重乳状液的性质及其制备 | 第20页 |
1.4.1.3 多重乳状液的应用 | 第20页 |
1.4.2 胶束溶液 | 第20-22页 |
1.4.2.1 胶束的形状及结构 | 第21页 |
1.4.2.2 胶束的性质及制备 | 第21-22页 |
1.4.2.3 胶束的应用 | 第22页 |
1.4.3 自微乳化递药系统 | 第22-24页 |
1.4.3.1 自微乳化递药系统的组成 | 第22-23页 |
1.4.3.2 自微乳化递药系统的应用 | 第23-24页 |
1.5 本课题研究内容 | 第24-25页 |
第二章 蜂胶中有效成分的提取及优化 | 第25-41页 |
2.1 引言 | 第25页 |
2.2 实验仪器、试剂及材料 | 第25-26页 |
2.2.1 实验仪器 | 第25-26页 |
2.2.2 试剂及材料 | 第26页 |
2.3 试验方法 | 第26-30页 |
2.3.1 蜂胶品质鉴定 | 第26-27页 |
2.3.1.1 蜂胶的感官鉴定 | 第26页 |
2.3.1.2 乙醇提取物测定 | 第26页 |
2.3.1.3 杂质和蜂蜡含量测定 | 第26页 |
2.3.1.4 黄酮类化合物含量测定 | 第26-27页 |
2.3.1.5 氧化时间测定 | 第27页 |
2.3.2 黄酮类化合物含量的测定及标准曲线绘制 | 第27-28页 |
2.3.2.1 样品中黄酮类化合物含量测定 | 第27页 |
2.3.2.2 芦丁标准曲线绘制 | 第27-28页 |
2.3.3 传统浸提法提取蜂胶中的黄酮类化合物 | 第28-29页 |
2.3.3.1 蜂胶预处理 | 第28页 |
2.3.3.2 浸提时间对浸提效果影响 | 第28页 |
2.3.3.3 乙醇浓度对浸提效果影响 | 第28页 |
2.3.3.4 料液比对浸提效果影响 | 第28-29页 |
2.3.3.5 温度对浸提效果影响 | 第29页 |
2.3.3.6 正交试验 | 第29页 |
2.3.4 超声波辅助法提取蜂胶中的黄酮类化合物 | 第29-30页 |
2.3.4.1 超声功率对提取效果的影响 | 第29页 |
2.3.4.2 超声时间对提取效果的影响 | 第29-30页 |
2.3.4.3 料液比对提取效果的影响 | 第30页 |
2.3.4.4 乙醇浓度对提取效果的影响 | 第30页 |
2.3.4.5 正交试验 | 第30页 |
2.4 结果与讨论 | 第30-40页 |
2.4.1 蜂胶品质鉴定 | 第30-31页 |
2.4.2 芦丁标准曲线绘制 | 第31-32页 |
2.4.3 传统浸提法提取蜂胶中的黄酮类化合物 | 第32-36页 |
2.4.3.1 浸提时间对浸提效果影响 | 第32页 |
2.4.3.2 乙醇浓度对浸提效果影响 | 第32-33页 |
2.4.3.3 料液比对浸提效果影响 | 第33-34页 |
2.4.3.4 温度对浸提效果影响 | 第34-35页 |
2.4.3.5 正交试验结果及分析 | 第35-36页 |
2.4.4 超声波辅助法提取蜂胶中的黄酮类化合物 | 第36-40页 |
2.4.4.1 超声功率 | 第36-37页 |
2.4.4.2 超声时间 | 第37页 |
2.4.4.3 料液比 | 第37-38页 |
2.4.4.4 乙醇浓度 | 第38-39页 |
2.4.4.5 正交试验 | 第39-40页 |
2.5 本章小结 | 第40-41页 |
第三章 蜂胶提取物自微乳化递药系统(SMEDDS)的建立 | 第41-56页 |
3.1 引言 | 第41页 |
3.2 实验仪器、试剂及材料 | 第41-42页 |
3.2.1 实验仪器 | 第41页 |
3.2.2 试剂及材料 | 第41-42页 |
3.3 试验方法 | 第42-44页 |
3.3.1 分光光度法测量体系中黄酮类化合物方法建立 | 第42-43页 |
3.3.1.1 标准曲线绘制 | 第42页 |
3.3.1.2 精密度实验 | 第42页 |
3.3.1.3 稳定性实验 | 第42页 |
3.3.1.4 重复性实验 | 第42页 |
3.3.1.5 载药SMEDDS中的黄酮类化合物含量的测量 | 第42-43页 |
3.3.2 溶解度实验 | 第43页 |
3.3.3 三元相图实验 | 第43页 |
3.3.4 空白处方与载药处方三元相图比较 | 第43页 |
3.3.5 伪三元相图实验 | 第43页 |
3.3.6 油相比例优化 | 第43-44页 |
3.3.6.1 自微乳化时间测定 | 第43-44页 |
3.3.6.2 最大载药量的测定 | 第44页 |
3.3.6.3 粒径测定 | 第44页 |
3.3.7 稳定性评价 | 第44页 |
3.3.8 PEE-SMEDDS的配制 | 第44页 |
3.4 结果与讨论 | 第44-54页 |
3.4.1 分光光度法测量体系中黄酮类化合物方法建立 | 第44-47页 |
3.4.1.1 标准曲线绘制 | 第44-45页 |
3.4.1.2 精密度实验 | 第45-46页 |
3.4.1.3 稳定性实验 | 第46页 |
3.4.1.4 重复性实验 | 第46-47页 |
3.4.1.5 载药SMEDDS中蜂胶醇提物含量的测量 | 第47页 |
3.4.2 溶解度实验 | 第47-48页 |
3.4.3 三元相图实验 | 第48-51页 |
3.4.4 空白处方与载药处方三元相图比较 | 第51-52页 |
3.4.5 伪三元相图实验 | 第52-53页 |
3.4.6 油相比例优化 | 第53-54页 |
3.4.7 PEE-SMEDDS的配制 | 第54页 |
3.4.8 稳定性评价 | 第54页 |
3.5 本章小结 | 第54-56页 |
第四章 蜂胶醇提物在不同溶剂中的体外抑菌活性检测 | 第56-62页 |
4.1 引言 | 第56页 |
4.2 实验仪器、试剂及材料 | 第56-57页 |
4.2.1 实验仪器 | 第56页 |
4.2.2 试剂及材料 | 第56-57页 |
4.3 试验方法 | 第57-58页 |
4.3.1 培养基的配制 | 第57页 |
4.3.2 种子液的制备 | 第57页 |
4.3.3 蜂胶醇提物对测试菌株的抑菌圈测定 | 第57-58页 |
4.3.4 蜂胶醇提物对测试菌株的最小抑制浓度(MIC) | 第58页 |
4.4 结果及分析 | 第58-60页 |
4.4.1 抑菌圈大小的测定 | 第58-59页 |
4.4.2 最小抑制浓度(MIC)测定 | 第59页 |
4.4.3 溶剂对蜂胶醇提物抑菌效力的影响 | 第59-60页 |
4.5 本章小结 | 第60-62页 |
第五章 结论及展望 | 第62-64页 |
5.1 结论 | 第62-63页 |
5.2 展望 | 第63-64页 |
致谢 | 第64-65页 |
参考文献 | 第65-71页 |
附录1 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第71页 |