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蜂胶醇提物自微乳化递药系统的构建及其抗菌活性评价

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蜂胶醇提物自微乳化递药系统的构建及其抗菌活性评价
论文目录
 
摘要第1-5页
ABSTRACT第5-12页
第一章 文献综述第12-25页
  1.1 蜂胶的组成第12-13页
  1.2 蜂胶的生物活性第13-17页
    1.2.1 抗菌抗病毒第13-14页
    1.2.2 抗氧化第14页
    1.2.3 抗脂肪肝第14-15页
    1.2.4 抗肿瘤第15页
    1.2.5 黄酮类化合物作用机理第15-17页
      1.2.5.1 黄酮类化合物的抗菌机理第16页
      1.2.5.2 黄酮类化合物的抗氧化机理第16-17页
  1.3 蜂胶中黄酮类化合物的提取进展第17-19页
    1.3.1 溶剂浸提法第17页
    1.3.2 超声波辅助法第17-18页
    1.3.3 微波辅助法第18页
    1.3.4 酶辅助法第18-19页
    1.3.5 表面活性剂辅助法第19页
  1.4 微乳化溶液第19-24页
    1.4.1 乳状液第19-20页
      1.4.1.1 乳状液及其分类第19-20页
      1.4.1.2 多重乳状液的性质及其制备第20页
      1.4.1.3 多重乳状液的应用第20页
    1.4.2 胶束溶液第20-22页
      1.4.2.1 胶束的形状及结构第21页
      1.4.2.2 胶束的性质及制备第21-22页
      1.4.2.3 胶束的应用第22页
    1.4.3 自微乳化递药系统第22-24页
      1.4.3.1 自微乳化递药系统的组成第22-23页
      1.4.3.2 自微乳化递药系统的应用第23-24页
  1.5 本课题研究内容第24-25页
第二章 蜂胶中有效成分的提取及优化第25-41页
  2.1 引言第25页
  2.2 实验仪器、试剂及材料第25-26页
    2.2.1 实验仪器第25-26页
    2.2.2 试剂及材料第26页
  2.3 试验方法第26-30页
    2.3.1 蜂胶品质鉴定第26-27页
      2.3.1.1 蜂胶的感官鉴定第26页
      2.3.1.2 乙醇提取物测定第26页
      2.3.1.3 杂质和蜂蜡含量测定第26页
      2.3.1.4 黄酮类化合物含量测定第26-27页
      2.3.1.5 氧化时间测定第27页
    2.3.2 黄酮类化合物含量的测定及标准曲线绘制第27-28页
      2.3.2.1 样品中黄酮类化合物含量测定第27页
      2.3.2.2 芦丁标准曲线绘制第27-28页
    2.3.3 传统浸提法提取蜂胶中的黄酮类化合物第28-29页
      2.3.3.1 蜂胶预处理第28页
      2.3.3.2 浸提时间对浸提效果影响第28页
      2.3.3.3 乙醇浓度对浸提效果影响第28页
      2.3.3.4 料液比对浸提效果影响第28-29页
      2.3.3.5 温度对浸提效果影响第29页
      2.3.3.6 正交试验第29页
    2.3.4 超声波辅助法提取蜂胶中的黄酮类化合物第29-30页
      2.3.4.1 超声功率对提取效果的影响第29页
      2.3.4.2 超声时间对提取效果的影响第29-30页
      2.3.4.3 料液比对提取效果的影响第30页
      2.3.4.4 乙醇浓度对提取效果的影响第30页
      2.3.4.5 正交试验第30页
  2.4 结果与讨论第30-40页
    2.4.1 蜂胶品质鉴定第30-31页
    2.4.2 芦丁标准曲线绘制第31-32页
    2.4.3 传统浸提法提取蜂胶中的黄酮类化合物第32-36页
      2.4.3.1 浸提时间对浸提效果影响第32页
      2.4.3.2 乙醇浓度对浸提效果影响第32-33页
      2.4.3.3 料液比对浸提效果影响第33-34页
      2.4.3.4 温度对浸提效果影响第34-35页
      2.4.3.5 正交试验结果及分析第35-36页
    2.4.4 超声波辅助法提取蜂胶中的黄酮类化合物第36-40页
      2.4.4.1 超声功率第36-37页
      2.4.4.2 超声时间第37页
      2.4.4.3 料液比第37-38页
      2.4.4.4 乙醇浓度第38-39页
      2.4.4.5 正交试验第39-40页
  2.5 本章小结第40-41页
第三章 蜂胶提取物自微乳化递药系统(SMEDDS)的建立第41-56页
  3.1 引言第41页
  3.2 实验仪器、试剂及材料第41-42页
    3.2.1 实验仪器第41页
    3.2.2 试剂及材料第41-42页
  3.3 试验方法第42-44页
    3.3.1 分光光度法测量体系中黄酮类化合物方法建立第42-43页
      3.3.1.1 标准曲线绘制第42页
      3.3.1.2 精密度实验第42页
      3.3.1.3 稳定性实验第42页
      3.3.1.4 重复性实验第42页
      3.3.1.5 载药SMEDDS中的黄酮类化合物含量的测量第42-43页
    3.3.2 溶解度实验第43页
    3.3.3 三元相图实验第43页
    3.3.4 空白处方与载药处方三元相图比较第43页
    3.3.5 伪三元相图实验第43页
    3.3.6 油相比例优化第43-44页
      3.3.6.1 自微乳化时间测定第43-44页
      3.3.6.2 最大载药量的测定第44页
      3.3.6.3 粒径测定第44页
    3.3.7 稳定性评价第44页
    3.3.8 PEE-SMEDDS的配制第44页
  3.4 结果与讨论第44-54页
    3.4.1 分光光度法测量体系中黄酮类化合物方法建立第44-47页
      3.4.1.1 标准曲线绘制第44-45页
      3.4.1.2 精密度实验第45-46页
      3.4.1.3 稳定性实验第46页
      3.4.1.4 重复性实验第46-47页
      3.4.1.5 载药SMEDDS中蜂胶醇提物含量的测量第47页
    3.4.2 溶解度实验第47-48页
    3.4.3 三元相图实验第48-51页
    3.4.4 空白处方与载药处方三元相图比较第51-52页
    3.4.5 伪三元相图实验第52-53页
    3.4.6 油相比例优化第53-54页
    3.4.7 PEE-SMEDDS的配制第54页
    3.4.8 稳定性评价第54页
  3.5 本章小结第54-56页
第四章 蜂胶醇提物在不同溶剂中的体外抑菌活性检测第56-62页
  4.1 引言第56页
  4.2 实验仪器、试剂及材料第56-57页
    4.2.1 实验仪器第56页
    4.2.2 试剂及材料第56-57页
  4.3 试验方法第57-58页
    4.3.1 培养基的配制第57页
    4.3.2 种子液的制备第57页
    4.3.3 蜂胶醇提物对测试菌株的抑菌圈测定第57-58页
    4.3.4 蜂胶醇提物对测试菌株的最小抑制浓度(MIC)第58页
  4.4 结果及分析第58-60页
    4.4.1 抑菌圈大小的测定第58-59页
    4.4.2 最小抑制浓度(MIC)测定第59页
    4.4.3 溶剂对蜂胶醇提物抑菌效力的影响第59-60页
  4.5 本章小结第60-62页
第五章 结论及展望第62-64页
  5.1 结论第62-63页
  5.2 展望第63-64页
致谢第64-65页
参考文献第65-71页
附录1 攻读硕士学位期间发表的论文第71页

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