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杂色鲍变态差异表达基因筛选及TH信号通路作用分析

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杂色鲍变态差异表达基因筛选及TH信号通路作用分析
论文目录
 
摘要第1-6页
Abstract第6-12页
主要符号表第12-13页
第1章 引言第13-26页
  1.1 海洋无脊椎动物幼虫的变态反应与定量PCR芯片技术第13-14页
  1.2 海洋无脊椎动物TH信号通路的研究进展第14-23页
    1.2.1 甲状腺激素的合成第15-16页
    1.2.2 甲状腺激素的分解第16-18页
    1.2.3 甲状腺激素对下游基因的调控机制第18-23页
  1.3 内参筛选第23-24页
  1.4 本研究的目的和意义第24页
  1.5 主要研究内容和技术路线第24-26页
    1.5.1 主要研究内容第24-25页
    1.5.2 主要技术路线第25-26页
第2章 杂色鲍幼虫变态差异表达基因的筛选第26-37页
  2.1 材料第26页
  2.2 方法第26页
  2.3 结果第26-28页
    2.3.1 杂色鲍幼虫变态过程差异表达基因的筛选结果第26页
    2.3.2 GO注释结果第26-28页
  2.4 讨论第28-37页
第3章 杂色鲍幼虫变态过程内参基因的筛选第37-49页
  3.1 材料第37-38页
    3.1.1 实验样品的采集第37页
    3.1.2 实验主要仪器和试剂第37-38页
    3.1.3 候选内参基因的选择及引物设计第38页
  3.2 实验方法第38-39页
    3.2.1 杂色鲍幼虫变态过程总RNA的提取第38页
    3.2.2 合成RT-PCR c DNA第一链和RT-PCR扩增获取基因片段第38页
    3.2.3 实时荧光定量PCR反应体系及条件第38-39页
    3.2.4 基因引物特异性鉴定第39页
    3.2.5 引物扩增效率和标准曲线的检验第39页
    3.2.6 内参基因表达稳定性分析第39页
  3.3 结果第39-46页
    3.3.1 杂色鲍幼虫总RNA的提取结果第39-40页
    3.3.2 杂色鲍幼虫变态过程内参基因筛选结果第40-46页
  3.4 讨论第46-49页
第4章 定量PCR芯片研究杂色鲍变态差异表达基因第49-61页
  4.1 材料第49页
    4.1.1 实验样品的采集第49页
    4.1.2 实验主要仪器和试剂第49页
    4.1.3 引物设计第49页
  4.2 实验方法第49-50页
    4.2.1 杂色鲍幼虫变态过程总RNA的提取第49页
    4.2.2 合成RT-PCR c DNA第一链和RT-PCR扩增获取基因片段第49页
    4.2.3 实时荧光定量PCR反应体系及条件第49页
    4.2.4 基因引物特异性鉴定第49页
    4.2.5 杂色鲍幼虫变态差异表达基因的表达分析第49-50页
    4.2.6 杂色鲍幼虫变态差异表达基因的作用网络分析第50页
  4.3 结果第50-55页
  4.4 讨论第55-61页
第5章 TH信号通路在杂色鲍变态中的作用分析第61-85页
  5.1 材料第61-62页
    5.1.1 实验样品的采集第61页
    5.1.2 实验主要仪器和试剂第61页
    5.1.3 引物第61-62页
  5.2 实验方法第62-67页
    5.2.1 杂色鲍幼虫变态过程总RNA的提取第62页
    5.2.2 合成RT-PCR c DNA第一链和RT-PCR扩增获取基因片段第62页
    5.2.3 SMART-RACE技术获取基因全长第62-64页
    5.2.4 割胶纯化基因片段第64页
    5.2.5 与PET19-T质粒载体连接第64页
    5.2.6 JM109感受态细胞的转化及筛选第64页
    5.2.7 质粒插入片段的PCR检测第64-65页
    5.2.8 质粒测序第65页
    5.2.9 目的基因的生物信息学分析第65页
    5.2.10 实时荧光定量PCR反应体系及条件第65页
    5.2.11 T_3诱导实验第65-66页
    5.2.12 RNA干扰实验第66-67页
  5.3 实验结果第67-82页
    5.3.1 TH信号通路关键基因在杂色鲍变态三时期的表达情况第67-69页
    5.3.2 T_3诱导实验结果第69页
    5.3.3 RACE-PCR扩增结果第69-70页
    5.3.4 TRβ 基因序列分析第70-77页
    5.3.5 TRβ RNAi实验结果第77-82页
  5.4 讨论第82-85页
第6章 结论与展望第85-87页
致谢第87-88页
参考文献第88-95页
在学期间发表的学术论文第95页

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