论文目录 | |
个人简历 | 第1-7页 |
摘要 | 第7-10页 |
ABSTRACT | 第10-14页 |
前言 | 第15-22页 |
第一章 锰诱导神经母细胞瘤细胞N2a损伤及机制1 材料与方法 | 第22-40页 |
1材料与方法 | 第22-28页 |
1.1 主要试剂及配置 | 第22-24页 |
1.2 主要仪器 | 第24页 |
1.3 实验方法 | 第24-28页 |
1.3.1 细胞培养 | 第24-25页 |
1.3.2 细胞分组与处理 | 第25页 |
1.3.3 细胞形态观察 | 第25页 |
1.3.4 细胞活性测定 | 第25页 |
1.3.5 凋亡测定 | 第25-26页 |
1.3.6 Western Blot检测 | 第26-27页 |
1.3.7 细胞荧光及ROS检测 | 第27页 |
1.3.8 细胞GSSG检测 | 第27-28页 |
1.3.9 细胞内SAM及SAH检测 | 第28页 |
1.4 统计方法 | 第28页 |
2 结果 | 第28-36页 |
2.1 锰暴露降低N2a细胞活性 | 第28-30页 |
2.2 锰诱导N2a细胞凋亡 | 第30-31页 |
2.3 锰诱导PP2Ac甲基化变化及上调tau蛋白磷酸化表达 | 第31-33页 |
2.4 锰诱导神经母细胞瘤细胞氧化应激增加 | 第33-34页 |
2.5 锰暴露对神经母细胞瘤细胞内GSSG影响 | 第34-35页 |
2.6 锰暴露破坏神经母细胞瘤细胞甲硫氨酸代谢循环 | 第35-36页 |
3 讨论与小结 | 第36-40页 |
第二章 甲硫氨酸调控PP2Ac甲基化保护锰诱导的N2a细胞损伤1 材料与方法 | 第40-57页 |
前言 | 第40-41页 |
1.材料 | 第41-42页 |
1.1 主要试剂及配置 | 第41页 |
1.2 主要仪器 | 第41页 |
1.3 实验方法 | 第41-42页 |
1.3.1 N2a细胞培养 | 第42页 |
1.3.2 甲硫氨酸浓度的选择 | 第42页 |
1.3.3 甲硫氨酸保护锰诱导N2a细胞损伤 | 第42页 |
1.3.4 WB检测甲硫氨酸对tau蛋白磷酸化及PP2Ac甲基化影响 | 第42页 |
1.3.5 甲硫氨酸补充对氧化应激的影响 | 第42页 |
1.3.6 甲硫氨酸补充对甲硫氨酸代谢循环的影响 | 第42页 |
1.4 统计方法 | 第42页 |
2 结果 | 第42-51页 |
2.1 甲硫氨酸对N2a细胞活性影响 | 第42-43页 |
2.2 甲硫氨酸对锰损伤N2a细胞活性的作用 | 第43-45页 |
2.3 甲硫氨酸保护锰诱导N2a细胞凋亡 | 第45-46页 |
2.4 甲硫氨酸对锰诱导N2a细胞tau磷酸化及PP2Ac甲基化作用 | 第46-48页 |
2.5 甲硫氨酸对锰诱导N2a细胞内ROS和GSH作用 | 第48-50页 |
2.6 甲硫氨酸对细胞内SAM和SAH作用 | 第50-51页 |
3 讨论与小结 | 第51-57页 |
第三章 ABL-127调控PP2Ac甲基化保护锰诱导的N2a细胞损伤1 材料与方法 | 第57-68页 |
前言 | 第57页 |
1材料和方法 | 第57-58页 |
1.1 主要试剂及配置 | 第57-58页 |
1.2 主要仪器 | 第58页 |
1.3 实验方法 | 第58页 |
1.3.1 细胞处理及分组 | 第58页 |
1.3.2 ABL-127保护锰诱导N2a细胞损伤 | 第58页 |
1.3.3 WB检测ABL-127对tau磷酸化及PP2Ac甲基化影响 | 第58页 |
1.3.4 ABL-127干预对锰诱导的氧化应激作用 | 第58页 |
1.4 统计方法 | 第58页 |
2 结果 | 第58-65页 |
2.1 ABL-127工作液的选择 | 第58-59页 |
2.2 ABL-127在锰损伤N2a细胞中的作用 | 第59-60页 |
2.3 ABL-127对锰诱导N2a细胞凋亡作用 | 第60-61页 |
2.4 ABL-127对锰诱导N2a细胞tau磷酸化和PP2Ac甲基化作用 | 第61-63页 |
2.5 ABL-127对锰诱导N2a细胞ROS和GSSG作用 | 第63-65页 |
3 讨论与小结 | 第65-68页 |
总结与展望 | 第68-70页 |
参考文献 | 第70-86页 |
附录 | 第86-88页 |
综述 | 第88-102页 |
参考文献 | 第97-102页 |
致谢 | 第102-103页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第103页 |