论文目录 | |
| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 英文缩略表 | 第11-13页 |
| 第一章 综述 | 第13-19页 |
| · 狂犬病 | 第13-15页 |
| · 病原学 | 第13-15页 |
| · 流行病学 | 第15页 |
| · 预防与控制 | 第15页 |
| · 狂犬病病毒抗体的检测 | 第15-17页 |
| · 小鼠血清中和试验（MNT） | 第16页 |
| · 快速荧光灶抑制试验（RFFIT） | 第16页 |
| · 间接免疫荧光法（IFA） | 第16-17页 |
| · 酶联免疫吸附试验（ELISA） | 第17页 |
| · 实验目的 | 第17-19页 |
| 第二章 狂犬病病毒M基因的克隆与原核表达 | 第19-34页 |
| · 实验材料 | 第19-22页 |
| · 病毒、菌株及载体 | 第19页 |
| · 试剂 | 第19页 |
| · 所用溶液及配制 | 第19-22页 |
| · 主要仪器设备 | 第22页 |
| · 方法 | 第22-29页 |
| · RV-M基因的克隆 | 第22-25页 |
| · RV-M重组表达质粒的构建 | 第25-27页 |
| · 稀有密码子（GCUA）的分析 | 第27页 |
| · 重组蛋白的表达与鉴定 | 第27页 |
| · 重组蛋白的Westernblot鉴定 | 第27-28页 |
| · 重组蛋白的可溶性分析 | 第28页 |
| · 重组蛋白的纯化 | 第28页 |
| · 重组蛋白的定量分析 | 第28-29页 |
| · 结果与分析 | 第29-33页 |
| · pEasy-T1-RV-M克隆载体的鉴定 | 第29-30页 |
| · 阳性重组质粒的鉴定 | 第30-31页 |
| · RVM的稀有密码子的分析 | 第31页 |
| · 重组蛋白的诱导表达 | 第31-32页 |
| · 重组蛋白的Westernblot鉴定 | 第32页 |
| · 重组蛋白的可溶性分析及纯化 | 第32-33页 |
| · RV-M蛋白浓度的定量结果 | 第33页 |
| · 讨论 | 第33-34页 |
| 第三章 基于M和全病毒检测RV抗体的间接ELISA方法的建立 | 第34-47页 |
| · 实验材料 | 第34-35页 |
| · 抗原及血清 | 第34页 |
| · 主要试剂 | 第34页 |
| · 所用溶液及配制 | 第34-35页 |
| · 主要仪器设备 | 第35页 |
| · 实验方法 | 第35-38页 |
| · RV-M重组蛋白间接ELISA方法的建立 | 第35-37页 |
| · 用RV作为诊断抗原间接ELISA方法的建立 | 第37-38页 |
| · 实验结果 | 第38-45页 |
| · 基于RV-M蛋白建立的间接ELISA方法的反应条件的优化 | 第38-41页 |
| · 基于RV-M的间接ELISA方法的重复性试验的结果 | 第41-42页 |
| · 浓缩的RV进行RT-PCR的鉴定结果 | 第42页 |
| · 用RV作为诊断抗原的间接ELISA方法的条件的优化 | 第42-44页 |
| · 基于RV的间接ELISA重复性试验的评价 | 第44-45页 |
| · 讨论 | 第45-47页 |
| 第四章 间接ELISA方法的比较 | 第47-58页 |
| · 实验材料 | 第47页 |
| · 抗原、血清及细胞 | 第47页 |
| · 试剂 | 第47页 |
| · 溶液的配制 | 第47页 |
| · 主要仪器设备 | 第47页 |
| · 实验方法 | 第47-49页 |
| · RV的间接ELISA | 第47-48页 |
| · RV-M的间接ELISA | 第48页 |
| · RV-N的间接ELISA | 第48页 |
| · RV-G的间接ELISA | 第48-49页 |
| · RV-P的间接ELISA | 第49页 |
| · 用统计学分析检测数据 | 第49页 |
| · 与商品化ELISA试剂盒的比较 | 第49页 |
| · 结果与分析 | 第49-57页 |
| · RV及四种蛋白的血清检测样本的结果 | 第49-54页 |
| · 临床样品的检测结果分析 | 第54-57页 |
| · 讨论 | 第57-58页 |
| 第五章 全文总结 | 第58-59页 |
| · 狂犬病病毒FLURYLEP毒株M基因的克隆与原核表达 | 第58页 |
| · 基于M蛋白和全病毒检测RV抗体的间接ELISA方法的建立 | 第58页 |
| · 间接ELISA方法的比较 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 作者简历 | 第63页 |
