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莲子多糖超声微波协同制备及其对乳杆菌增殖作用的研究

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莲子多糖超声微波协同制备及其对乳杆菌增殖作用的研究
论文目录
 
摘要第1-10页
ABSTRACT第10-13页
1 文献综述第13-22页
  1.1 莲子研究概况第13-15页
    1.1.1 莲子简介第13-14页
    1.1.2 莲子活性成分的研究进展第14-15页
  1.2 多糖的研究现状第15-18页
    1.2.1 多糖的提取第15-16页
    1.2.2 多糖的分离纯化第16-17页
    1.2.3 多糖结构表征的研究第17-18页
  1.3 益生元与益生菌的研究现状第18-21页
    1.3.1 乳杆菌的简介第18页
    1.3.2 益生元作用第18-20页
    1.3.3 多糖益生元的作用第20-21页
  1.4 本课题的研究意义与研究内容第21-22页
2 超声微波协同制备莲子多糖工艺优化的研究第22-34页
  2.1 材料与仪器第22-23页
    2.1.1 试验材料第22页
    2.1.2 试验仪器第22-23页
  2.2 试验方法第23-24页
    2.2.1 样品前处理第23页
    2.2.2 提取工艺流程第23页
    2.2.3 多糖得率的测定第23页
    2.2.4 单因素试验第23页
    2.2.5 响应面试验第23页
    2.2.6 验证试验第23页
    2.2.7 数据处理第23-24页
  2.3 结果与分析第24-32页
    2.3.1 单因素对多糖得率的影响第24-26页
    2.3.2 响应面试验设计和结果第26-28页
    2.3.3 模型的建立及显著性分析第28-29页
    2.3.4 各因素交互作用的响应面图和等高线图分析第29-32页
    2.3.5 提取工艺的确定第32页
    2.3.6 与其他提取方法的对比第32页
  2.4 本章小结第32-34页
3 莲子多糖分离纯化的研究第34-44页
  3.1 材料与仪器第34页
    3.1.1 材料与试剂第34页
    3.1.2 主要仪器第34页
  3.2 试验方法第34-37页
    3.2.1 莲子多糖的制备第34页
    3.2.2 多糖含量的测定第34-35页
    3.2.3 蛋白质含量的测定第35页
    3.2.4 脱蛋白试验第35-36页
    3.2.5 DEAE-52纤维素柱分级第36页
    3.2.6 Sephadex G-20葡聚糖凝胶柱分级莲子多糖第36页
    3.2.7 紫外-可见光谱扫描分析第36-37页
  3.3 结果与分析第37-43页
    3.3.1 莲子多糖脱蛋白试验第37-41页
    3.3.2 莲子多糖的梯度洗脱第41-42页
    3.3.3 纯度鉴定第42-43页
  3.4 本章小结第43-44页
4 莲子多糖初级结构表征及乳杆菌增殖作用的研究第44-53页
  4.1 材料与仪器第44-45页
    4.1.1 试验材料第44页
    4.1.2 试验仪器设备第44-45页
  4.2 实验方法第45-46页
    4.2.1 莲子多糖分子量的测定第45页
    4.2.2 红外光谱的测定第45页
    4.2.3 场发射扫描电镜观察第45页
    4.2.4 培养基的制备第45页
    4.2.5 菌种活化第45-46页
    4.2.6 保加利亚乳杆菌菌体浓度的测定第46页
    4.2.7 莲子多糖对保加利亚乳杆菌生长曲线及pH的测定第46页
    4.2.8 代谢产物短链脂肪酸的测定第46页
  4.3 结果与分析第46-52页
    4.3.1 分子量的测定第46-48页
    4.3.2 红外光谱的测定第48-49页
    4.3.3 场发射扫描电镜观察第49页
    4.3.4 保加利亚乳杆菌菌体浓度的测定第49页
    4.3.5 莲子多糖对保加利亚乳杆菌生长曲线及pH的测定第49-50页
    4.3.6 短链脂肪酸标准曲线的测定第50页
    4.3.7 代谢产物短链脂肪酸的测定第50-52页
  4.4 本章小结第52-53页
参考文献第53-60页
攻读学位期间的学术论文与研究成果第60-61页
致谢第61页

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