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基于群体感应研究香芹酚对鱼源荧光假单胞菌单/混生物被膜的抑制作用

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基于群体感应研究香芹酚对鱼源荧光假单胞菌单/混生物被膜的抑制作用
论文目录
 
摘要第1-6页
Abstract第6-8页
缩略词表第16-18页
第一章 绪论第18-30页
    1.1 水产品中的致腐菌和致病菌第18-19页
        1.1.1 荧光假单胞菌第18页
        1.1.2 气单胞菌第18页
        1.1.3 金黄色葡萄球菌第18-19页
    1.2 食品中的生物被膜第19-21页
        1.2.1 生物被膜的定义第19页
        1.2.2 混合生物被膜第19-20页
        1.2.3 水产品加工中生物被膜第20-21页
    1.3 群体感应第21-25页
        1.3.1 群体感应与生物被膜第21-22页
        1.3.2 革兰氏阴性菌的群体感应第22-24页
        1.3.3 革兰氏阳性菌的群体感应第24-25页
    1.4 精油第25-28页
        1.4.1 精油第25-27页
        1.4.2 精油与生物被膜第27-28页
    1.5 本研究的目的、意义和内容第28-30页
第二章 十种香芹酚和肉桂醛结构类似物的抑菌和抗生物被膜分析第30-41页
    2.1 前言第30页
    2.2 材料与设备第30-32页
        2.2.1 菌株及培养条件第30页
        2.2.2 试剂第30-31页
        2.2.3 主要仪器设备第31-32页
    2.3 试验方法第32-33页
        2.3.1 EOs成分MIC测定第32页
        2.3.2 结晶紫染法测定生物被膜第32页
        2.3.3 胞外多糖的测定第32-33页
        2.3.4 泳动和蜂拥的检测第33页
        2.3.5 显微镜观察细菌粘附第33页
        2.3.6 生物报告菌检测AHLs第33页
    2.4 数据处理和分析第33页
    2.5 结果分析第33-38页
        2.5.1 EOs成分的MIC第33-34页
        2.5.2 EOs成分抑制生物被膜第34-35页
        2.5.3 EOs成分抑制胞外多糖第35页
        2.5.4 EOs成分抑制粘附第35-36页
        2.5.5 EOs成分抑制运动能力第36-37页
        2.5.6 EOs成分抑制AHLs分泌第37-38页
    2.6 讨论第38-41页
第三章 香芹酚介导AHL信号抑制荧光假单胞菌生物被膜第41-74页
    3.1 前言第41页
    3.2 材料与设备第41-42页
        3.2.1 菌株及培养条件第41页
        3.2.2 试剂第41-42页
        3.2.3 主要仪器设备第42页
    3.3 实验方法第42-47页
        3.3.1 香芹酚MIC测定第42页
        3.3.2 结晶紫染色测定生物被膜第42页
        3.3.3 胞外多糖的测定第42-43页
        3.3.4 泳动和蜂拥的检测第43页
        3.3.5 CLSM观察生物被膜结构第43页
        3.3.6 胞外蛋白酶活性测定第43页
        3.3.7 转录组学测序第43-46页
        3.3.8 荧光定量PCR验证第46-47页
    3.4 数据处理和分析第47-48页
    3.5 结果分析第48-71页
        3.5.1 香芹酚对荧光假单胞菌的MIC第48页
        3.5.2 香芹酚抑制野生株和缺失株生物被膜第48-49页
        3.5.3 香芹酚抑制野生株和缺失株胞外多糖第49页
        3.5.4 CLSM观察香芹酚抑制野生株和缺失株生物被膜第49-50页
        3.5.5 香芹酚抑制野生株和缺失株运动能力第50-51页
        3.5.6 香芹酚抑制野生株和缺失株胞外蛋白酶第51页
        3.5.7 香芹酚抑制野生株和缺失株AHLs信号第51-55页
        3.5.8 分子对接模拟香芹酚与群体感应蛋白的结合第55-57页
        3.5.9 转录组分析香芹酚对荧光假单胞菌被膜状态基因表达的影响第57-70页
        3.5.10 香芹酚对荧光假单胞菌的调控机制模拟图第70-71页
    3.6 讨论第71-74页
第四章 香芹酚抑制荧光假单胞菌和金黄色葡萄球菌混合生物被膜形成第74-95页
    4.1 前言第74-75页
    4.2 材料与设备第75页
        4.2.1 材料、菌株及培养条件第75页
        4.2.2 试剂第75页
        4.2.3 主要仪器设备第75页
    4.3 实验方法第75-78页
        4.3.1 灭菌鱼汁制备第75-76页
        4.3.2 被膜菌的计数第76页
        4.3.3 浮游菌的测定第76页
        4.3.4 结晶紫法测定生物被膜第76页
        4.3.5 胞外多糖的检测第76页
        4.3.6 CLSM观察生物被膜第76页
        4.3.7 SEM观察粘附和被膜第76-77页
        4.3.8 腐败能力测定第77页
        4.3.9 溶血性测定第77页
        4.3.10 DPD和 C4-HSL的外源添加第77-78页
    4.4 数据处理和分析第78页
    4.5 结果分析第78-91页
        4.5.1 混合培养中的浮游菌和生物被膜菌第78-79页
        4.5.2 多组显微镜观察混合被膜结构第79-80页
        4.5.3 香芹酚对共培养浮游菌抑制第80-81页
        4.5.4 香芹酚对混合生物被膜菌的抑制第81-82页
        4.5.5 香芹酚降低混合生物被膜和多糖分泌第82-83页
        4.5.6 CLSM观察香芹酚对混合生物被膜结构的影响第83-86页
        4.5.7 SEM观察香芹酚对混合生物被膜结构的影响第86-87页
        4.5.8 香芹酚减少荧光假单胞菌蛋白酶活性和TVB-N第87-88页
        4.5.9 香芹酚抑制金黄色葡萄球菌的溶血性第88-89页
        4.5.10 香芹酚对群体感应信号的影响第89-91页
        4.5.11 外源DPD和 C_4-HSL添加对混合生物被膜的影响第91页
    4.6 讨论第91-95页
第五章 总结、创新点和展望第95-96页
    5.1 总结第95页
    5.2 创新点第95页
    5.3 展望第95-96页
参考文献第96-114页
致谢第114-115页
附录第115-153页

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