论文目录 | |
| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-9页 |
| 缩略词表 | 第10-14页 |
| 第一章 前言 | 第14-28页 |
| 1.1 高温和干旱对植物光合作用的影响 | 第14-19页 |
| 1.1.1 高温对植物光合作用的影响 | 第14-17页 |
| 1.1.2 干旱对植物光合作用的影响 | 第17-19页 |
| 1.2 高温和干旱胁迫下的光保护机制 | 第19-24页 |
| 1.2.1 水水循环 | 第20页 |
| 1.2.2 光呼吸 | 第20-21页 |
| 1.2.3 环式电子流 | 第21-24页 |
| 1.3 海藻糖和抗逆性 | 第24-26页 |
| 1.3.1 海藻糖的发现及作用 | 第24-25页 |
| 1.3.2 海藻糖的作用机理 | 第25页 |
| 1.3.3 海藻糖对光合作用的保护机制 | 第25-26页 |
| 1.3.4 海藻糖抗逆性研究的手段 | 第26页 |
| 1.4 研究目的及意义 | 第26-28页 |
| 第二章 材料与方法 | 第28-35页 |
| 2.1 实验设计 | 第28页 |
| 2.2 植物材料与处理 | 第28-30页 |
| 2.2.1 植物材料的选择和培养 | 第28-29页 |
| 2.2.2 海藻糖预处理与高温干旱胁迫处理 | 第29-30页 |
| 2.2.3 抑制剂处理 | 第30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-34页 |
| 2.3.1 叶绿素荧光参数以及P700~+初始还原速率的测量 | 第30-31页 |
| 2.3.2 环式电子流速率测量 | 第31-32页 |
| 2.3.3 PQ库测量 | 第32页 |
| 2.3.4 P515/P535测量 | 第32-33页 |
| 2.3.5 光合速率的测量 | 第33页 |
| 2.3.6 类囊体膜蛋白提取和蛋白定量 | 第33页 |
| 2.3.7 SDS-PAGE和Western Blotting检测 | 第33-34页 |
| 2.4 重复样品设置的方法和统计学分析 | 第34-35页 |
| 第三章 结果与分析 | 第35-50页 |
| 3.1 高温干旱胁迫下,海藻糖对于P700~+初始还原速率的影响 | 第35-36页 |
| 3.2 高温干旱胁迫下,环式电子流两条途径的分析 | 第36-39页 |
| 3.2.1 PGR5-依赖环式电子流途径抑制剂--AA | 第36-38页 |
| 3.2.2 NDH-依赖环式电子流途径的变化 | 第38-39页 |
| 3.3 高温干旱胁迫下,光系统Ⅱ反应中心D1蛋白的变化 | 第39-41页 |
| 3.4 高温干旱胁迫下,外源海藻糖对于光系统Ⅱ活性的影响 | 第41-45页 |
| 3.4.1 高温干旱胁迫下,外源海藻糖对于Fv/Fm的影响 | 第41-42页 |
| 3.4.2 高温干旱胁迫下,外源海藻糖对于光系统Ⅱ能量耗散的影响 | 第42-44页 |
| 3.4.3 高温干旱胁迫下,光合放氧速率的变化 | 第44-45页 |
| 3.5 高温干旱胁迫下,外源海藻糖对于光系统Ⅱ电子传递速率的影响 | 第45-46页 |
| 3.6 高温干旱胁迫下,外源海藻糖对于PQ库的影响 | 第46-47页 |
| 3.7 高温干旱胁迫下,外源海藻糖对于P515信号的影响 | 第47-50页 |
| 3.7.1 ATP合酶活性 | 第47-48页 |
| 3.7.2 跨膜质子梯度(△pH) | 第48-50页 |
| 第四章 讨论 | 第50-58页 |
| 4.1 高温干旱胁迫下,小麦幼苗的光系统Ⅱ变化 | 第50-51页 |
| 4.2 高温干旱胁迫下,小麦幼苗的P515信号变化 | 第51-52页 |
| 4.3 外源海藻糖对于高温干旱胁迫下小麦幼苗光系统Ⅱ的光保护 | 第52-54页 |
| 4.4 高温干旱胁迫下,海藻糖和环式电子流 | 第54-55页 |
| 4.5 小麦幼苗对高温、干旱胁迫及高温干旱共胁迫的响应差异 | 第55-58页 |
| 第五章 总结与展望 | 第58-61页 |
| 5.1 总结 | 第58-59页 |
| 5.2 进一步的研究设想 | 第59-61页 |
| 参考文献 | 第61-77页 |
| 硕士期间科研成果 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78页 |
