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维生素D受体(VDR)调控雄性生殖相关基因表达及其互作蛋白筛选研究

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维生素D受体(VDR)调控雄性生殖相关基因表达及其互作蛋白筛选研究
论文目录
 
摘要第1-7页
abstract第7-9页
缩略词第9-13页
第一章 绪论第13-24页
  1.1 维生素D受体第13-21页
    1.1.1 VDR结构及功能第13-15页
    1.1.2 VDR基因组及非基因组效应第15-17页
    1.1.3 VDR相互作用蛋白因子效应第17-18页
    1.1.4 VDR的生理学功能及相关疾病第18-21页
  1.2 转录组分析研究进展第21-22页
  1.3 研究的目的意义第22-24页
第2章 VDR及相关基因在VDR敲除鼠不同组织的表达分析第24-32页
  2.1 实验材料第24-25页
    2.1.1 实验动物第24页
    2.1.2 实验试剂第24-25页
    2.1.3 实验仪器第25页
    2.1.4 实验引物第25页
  2.2 实验方法第25-27页
    2.2.1 敲除鼠表型观察第25页
    2.2.2 VDR及相关基因表达鉴定第25-27页
    2.2.3 蛋白水平检测敲除鼠VDR表达第27页
  2.3 实验结果第27-30页
    2.3.1 敲除鼠表型分析第27-28页
    2.3.2 WesternBlot检测VDR在不同组织的表达差异第28页
    2.3.3 VDR敲除鼠VDR基因表达分析第28-29页
    2.3.4 VDR敲除鼠中维生素D代谢相关基因表达水平检测第29-30页
  2.4 讨论第30-31页
  2.5 小结第31-32页
第3章 VDR敲除鼠睾丸组织转录组测序分析第32-48页
  3.1 实验材料第32-33页
    3.1.1 实验动物第32页
    3.1.2 实验试剂第32页
    3.1.3 实验仪器第32页
    3.1.4 实验引物第32-33页
  3.2 实验步骤第33-35页
    3.2.1 小鼠睾丸组织总RNA提取第33页
    3.2.2 小鼠睾丸组织转录组测序第33-34页
    3.2.3 基因表达谱分析第34-35页
    3.2.4 实时荧光PCR验证基因表达水平第35页
  3.3 实验结果第35-44页
    3.3.1 测序质量评估第35-36页
    3.3.2 基因组组装及注解第36-37页
    3.3.3 差异表达基因筛选第37-41页
    3.3.4 GO富集分析第41-42页
    3.3.5 KEGG功能富集分析第42-43页
    3.3.6 实时荧光定量PCR验证差异表达基因第43-44页
  3.4 讨论第44-46页
  3.5 小结第46-48页
第4章 酵母双杂交筛选VDR互作蛋白第48-67页
  4.1 实验材料第48-49页
    4.1.1 实验动物、菌株及质粒第48页
    4.1.2 实验试剂第48-49页
    4.1.3 实验引物第49页
  4.2 实验方法第49-55页
    4.2.1 VDR诱饵表达载体(pGBKT7-VDR)的构建与鉴定第49-52页
    4.2.2 WesternBlot检测VDR基因在酿酒酵母AH109中表达第52-53页
    4.2.3 重组表达载体pGBKT7-VDR表达VDR诱饵蛋白自激活检测第53页
    4.2.4 删除转录激活域后VDR诱饵表达载体构建与鉴定第53-54页
    4.2.5 VDR互作蛋白筛选第54页
    4.2.6 β-阳性克隆测定第54-55页
  4.3 实验结果第55-63页
    4.3.1 VDR诱饵表达载体(pGBKT7-VDR)的构建第55-56页
    4.3.2 VDR诱饵蛋白表达检测第56-57页
    4.3.3 VDR诱饵蛋白自激活验证第57页
    4.3.4 删除转录激活域后VDR诱饵表达载体的构建及自激活验证第57-59页
    4.3.5 酵母双杂交效率验证及阳性克隆筛选第59-60页
    4.3.6 VDR互作蛋白鉴定第60-62页
    4.3.7 阳性克隆鉴定第62-63页
  4.4 讨论第63-65页
  4.5 小结第65-67页
结论第67-69页
参考文献第69-75页
附录第75-77页
攻读硕士期间取得的科研成果第77-79页
致谢第79页

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