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培养液的糖浓度对脂肪间充质干细胞生物学特性及其疗效的影响研究

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培养液的糖浓度对脂肪间充质干细胞生物学特性及其疗效的影响研究
论文目录
 
摘要第1-5页
abstract第5-10页
第一章 文献综述第10-17页
  1.1 间充质干细胞第10-11页
  1.2 间充质干细胞治疗糖尿病第11-12页
    1.2.1 糖尿病致病机理及特点第11页
    1.2.2 间充质干细胞治疗糖尿病现状第11-12页
  1.3 间充质干细胞来源第12-13页
    1.3.1 脐带来源第12页
    1.3.2 骨髓来源第12-13页
    1.3.3 脂肪来源第13页
  1.4 脂肪间充质干细胞第13-14页
    1.4.1 脂肪间充质干细胞应用优势第13-14页
    1.4.2 脂肪间充质干细胞消化分离的酶第14页
  1.5 脂肪间充质干细胞的应用前景探究第14-15页
    1.5.1 高葡萄糖浓度影响间充质干细胞生物学特性第14-15页
    1.5.2 高葡萄糖浓度影响间充质干细胞治疗糖尿病疗效第15页
    1.5.3 高葡萄糖浓度与脂肪间充质干细胞生物学特性及其治疗糖尿病疗效的关系第15页
  1.6 选题背景和研究内容第15-17页
    1.6.1 选题背景第15-16页
    1.6.2 主要研究内容第16-17页
第二章 基于胶原酶NB4的AD-MSC分离方法的建立第17-30页
  2.1 实验材料及仪器第17-19页
    2.1.1 实验材料第17-18页
    2.1.2 实验仪器第18-19页
  2.2 实验方法第19-22页
    2.2.1 主要溶液配制第19页
    2.2.2 实验分组第19-20页
    2.2.3 AD-MSC的分离培养第20页
    2.2.4 AD-MSC的传代、冻存第20-21页
    2.2.5 AD-MSC的形态鉴定第21页
    2.2.6 AD-MSC的表型鉴定第21-22页
    2.2.7 AD-MSC的分化能力鉴定第22页
  2.3 结果第22-27页
    2.3.1 胶原酶Ⅰ和胶原酶NB4消化能力比较第22-23页
    2.3.2 胶原酶Ⅰ和胶原酶NB4获得P0代细胞的比较第23-24页
    2.3.3 胶原酶Ⅰ和胶原酶NB4制备的细胞形态第24-25页
    2.3.4 胶原酶Ⅰ和胶原酶NB4制备的细胞表型第25-26页
    2.3.5 胶原酶Ⅰ和胶原酶NB4制备的细胞分化能力第26-27页
  2.4 讨论第27-30页
第三章 培养液糖浓度对AD-MSC生物学特性的影响第30-48页
  3.1 实验材料与仪器第30-32页
    3.1.1 实验材料第30-31页
    3.1.2 实验仪器第31-32页
  3.2 实验方法第32-37页
    3.2.1 主要溶液配制第32-33页
    3.2.2 高糖/低糖培养液对AD-MSC影响的考察第33-37页
  3.3 结果第37-45页
    3.3.1 高糖/低糖培养液对AD-MSC形态的影响第37-38页
    3.3.2 高糖/低糖培养液对AD-MSC表型的影响第38-39页
    3.3.3 高糖/低糖培养液对AD-MSC增殖的影响第39页
    3.3.4 高糖/低糖培养液对AD-MSC衰老的影响第39-42页
    3.3.5 高糖/低糖培养液对NeuroD和PDX-1基因表达的影响第42-43页
    3.3.6 高糖/低糖培养液对AD-MSC分泌IL-6的影响第43-44页
    3.3.7 高糖/低糖培养液对AD-MSC分化的影响第44-45页
  3.4 讨论第45-48页
第四章 高糖/低糖培养出的AD-MSC治疗糖尿病小鼠的疗效第48-54页
  4.1 实验材料与仪器第48-49页
    4.1.1 实验材料第48页
    4.1.2 实验仪器第48-49页
  4.2 实验方法第49-50页
    4.2.1 主要溶液配制第49页
    4.2.2 糖尿病小鼠模型的建立第49页
    4.2.3 AD-MSC治疗糖尿病小鼠第49-50页
    4.2.4 治疗效果的评价第50页
  4.3 结果第50-52页
    4.3.1 糖尿病小鼠造模效果评定第50页
    4.3.2 AD-MSC对糖尿病小鼠体重的影响第50-51页
    4.3.3 AD-MSC对糖尿病小鼠血糖的影响第51-52页
  4.4 讨论第52-54页
第五章 结论与展望第54-55页
  5.1 结论第54页
  5.2 展望第54-55页
参考文献第55-61页
发表论文和参加科研情况说明第61-62页
附录第62-63页
致谢第63-64页

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