论文目录 | |
摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-11页 |
第一章 文献综述 | 第11-20页 |
1.1 柠条研究现况 | 第11-12页 |
1.1.1 柠条适应干旱的生理机制研究进展 | 第11页 |
1.1.2 柠条适应干旱的分子机制研究进展 | 第11-12页 |
1.2 叶脉分化发育和响应逆境的研究进展 | 第12-15页 |
1.2.1 叶脉特征与植物对环境的适应性关系 | 第13页 |
1.2.2 叶脉发育的分子机制 | 第13-15页 |
1.3 转录因子家族AP2/ERF研究进展 | 第15-18页 |
1.3.1 AP2/ERF转录因子结构特点 | 第15-16页 |
1.3.2 ERF亚族转录因子抗逆功能研究进展 | 第16-17页 |
1.3.3 ERF亚族转录因子调控维管组织发育的研究进展 | 第17-18页 |
1.4 叶脉发育相关基因COV1研究进展 | 第18页 |
1.5 本研究的目的和意义 | 第18-20页 |
第二章 柠条转录因子CkERF2的克隆和表达分析 | 第20-42页 |
2.1 试验材料 | 第20-21页 |
2.1.1 试验动植物 | 第20页 |
2.1.2 菌株与质粒 | 第20页 |
2.1.3 试验材料及试剂盒 | 第20-21页 |
2.1.4 培养基和溶液 | 第21页 |
2.1.5 主要仪器 | 第21页 |
2.2 实验方法 | 第21-30页 |
2.2.1 CkERF2基因cDNA片段的克隆 | 第21-25页 |
2.2.2 CkERF2 mRNA水平表达量的检测 | 第25页 |
2.2.3 CkERF2蛋白原核表达 | 第25-27页 |
2.2.4 CkERF2原核表达蛋白的纯化 | 第27页 |
2.2.5 CkERF2抗体制备 | 第27页 |
2.2.6 柠条叶样CkERF2蛋白水平检测 | 第27-28页 |
2.2.7 CkERF2-GFP融合蛋白烟草瞬时表达 | 第28-30页 |
2.2.8 CkERF2酵母自激活实验 | 第30页 |
2.3 结果与分析 | 第30-39页 |
2.3.1 CkERF2基因cDNA片段的克隆及鉴定结果 | 第30-32页 |
2.3.2 CkERF2 mRNA水平相对表达量结果 | 第32页 |
2.3.3 CkERF2原核表达结果 | 第32-35页 |
2.3.4 重组蛋白纯化结果 | 第35-36页 |
2.3.5 多克隆抗体特异性检测结果 | 第36-37页 |
2.3.6 柠条叶样中CkERF2蛋白的表达分析结果 | 第37页 |
2.3.7 CkERF2-GFP融合蛋白烟草瞬转定位 | 第37-38页 |
2.3.8 酵母自激活实验结果 | 第38-39页 |
2.4 讨论 | 第39-41页 |
2.4.1 CkERF2抗体制备 | 第39页 |
2.4.2 相对表达量研究 | 第39-40页 |
2.4.3 蛋白组织定位实验 | 第40页 |
2.4.4 CkERF2转录因子酵母自激活活性 | 第40-41页 |
2.5 小结 | 第41-42页 |
第三章 柠条中CkCOV1的克隆和qRT-PCR检测 | 第42-49页 |
3.1 试验材料 | 第42页 |
3.2 实验方法 | 第42-43页 |
3.2.1 材料培养及处理方法 | 第42页 |
3.2.2 柠条总RNA提取及反转录 | 第42页 |
3.2.3 CkCOV1基因CDs区片段的克隆 | 第42-43页 |
3.2.4 CkCOV1生物信息学分析 | 第43页 |
3.2.5 梯度干旱胁迫处理下CkCOV1表达分析 | 第43页 |
3.3 结果与分析 | 第43-47页 |
3.3.1 干旱胁迫下柠条叶片叶脉 | 第43-44页 |
3.3.2 CkCOV1基因的克隆 | 第44页 |
3.3.3 CkCOV1序列分析 | 第44-45页 |
3.3.4 CkCOV1的生物信息学分析 | 第45-46页 |
3.3.5 CkCOV1的表达分析 | 第46-47页 |
3.4 讨论 | 第47-48页 |
3.5 小结 | 第48-49页 |
第四章 结论与展望 | 第49-51页 |
4.1 结论 | 第49页 |
4.2 研究展望 | 第49-51页 |
参考文献 | 第51-58页 |
主要缩略词和中英文对照表(Abbreviation Index) | 第58-59页 |
致谢 | 第59-60页 |
个人简介 | 第60页 |