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线粒体中C1QBP相互作用蛋白的研究

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线粒体中C1QBP相互作用蛋白的研究
论文目录
 
中文摘要第1-6页
Abstract第6-11页
缩略语第11-12页
前言第12-19页
研究现状、成果第12-18页
研究目的第18页
研究方法第18-19页
对象和方法第19-43页
  1.1 实验材料第19-20页
    1.1.1 细胞系第19页
    1.1.2 常用试剂第19-20页
    1.1.3 试剂盒第20页
  1.2 实验所需的仪器第20-21页
  1.3 各实验所需的主要试剂的配置第21-25页
    1.3.1 细胞培养所需第21-22页
    1.3.2 质粒的提取和纯化所需第22页
    1.3.3 线粒体提取所需第22-23页
    1.3.4 免疫印迹(Western Blot)所需第23-24页
    1.3.5 RT-PCR所需第24-25页
    1.3.6 酶解所需第25页
  1.4 研究方法第25-43页
    1.4.1 细胞培养相关技术第25-26页
    1.4.2 质粒的转化第26页
    1.4.3 质粒的提取和转化第26-27页
    1.4.4 质粒的转染第27页
    1.4.5 Western Blot细胞裂解第27-28页
    1.4.6 蛋白浓度测定第28页
    1.4.7 Western Blot第28-30页
    1.4.8 免疫共沉淀第30-31页
    1.4.9 银染第31页
    1.4.10 酶解第31-32页
    1.4.11 除盐第32-33页
    1.4.12 线粒体的提取第33-34页
    1.4.13 RNA的提取第34页
    1.4.14 RNA电泳第34-35页
    1.4.15 反转录第35页
    1.4.16 RT-PCR第35-36页
    1.4.17 免疫荧光第36-37页
    1.4.18 DNA电泳第37页
    1.4.19 切胶回收第37-39页
    1.4.20 DNA片段连接第39-40页
    1.4.21 siRNA转染肾癌细胞第40页
    1.4.22 PDH酶活性的检测第40-41页
    1.4.23 质谱鉴定及分析第41-43页
结果第43-54页
  2.1 线粒体的提取和纯化第43-45页
    2.1.1 线粒体提取纯度的验证第43-44页
    2.1.2 显微镜下线粒体的形状第44-45页
    2.1.3 讨论第45页
  2.2 免疫共沉淀法纯化与C1QBP相互作用的蛋白第45-49页
    2.2.1 不同免疫共沉淀实验条件比较第46-47页
    2.2.2 C1QBP相互作用蛋白质组第47-48页
    2.2.3 质谱鉴定结果第48-49页
    2.2.4 讨论第49页
  2.3 与C1QBP相互作用的蛋白验证第49-51页
    2.3.1 C1QBP相互作用蛋白DLAT的Western Blot鉴定第49-50页
    2.3.2 C1QBP与其相互作用蛋白DLAT的共定位鉴定第50-51页
    2.3.3 讨论第51页
  2.4 C1QBP影响PDH酶活性第51-54页
    2.4.1 在肾癌细胞中,C1QBP影响PDH活性第52-53页
    2.4.2 讨论第53-54页
讨论第54-57页
结论第57-59页
参考文献第59-62页
发表论文和参加科研情况说明第62-63页
综述 蛋白质组的研究进展第63-69页
综述参考文献第67-69页
致谢第69-70页
个人简历第70页

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