论文目录 | |
摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-12页 |
第1章 绪论 | 第12-26页 |
1.1 多肽-寡核苷酸偶联 | 第12-17页 |
1.1.1 片段合成法 | 第13-16页 |
1.1.2 固相逐步合成法 | 第16-17页 |
1.1.3 生化-酶偶联合成法 | 第17页 |
1.2 多肽-寡核苷酸分离提纯 | 第17-19页 |
1.2.1 基于色谱法的分离 | 第17-18页 |
1.2.2 基于电泳法的分离 | 第18-19页 |
1.3 多肽-寡核苷酸偶联物的应用 | 第19-24页 |
1.3.1 在治疗方面的应用 | 第19-23页 |
1.3.2 作为模型进行机理研究 | 第23-24页 |
1.3.3 作为人工酶 | 第24页 |
1.4 本文构思 | 第24-26页 |
第2章 多肽与寡核苷酸偶联方法的研究 | 第26-39页 |
2.1 前言 | 第26-28页 |
2.2 实验部分 | 第28-30页 |
2.2.1 实验试剂与设备 | 第28-29页 |
2.2.2 通过叠氮基与炔基的方法合成POCs | 第29页 |
2.2.3 通过EDC-NHS的方法合成POCs | 第29页 |
2.2.4 通过交联剂SPDP的方法合成POCs | 第29页 |
2.2.5 通过交联剂Sulfo-SMCC的方法合成POCs | 第29页 |
2.2.6 紫外-分光光度法初步测定DNA浓度 | 第29-30页 |
2.2.7 变性聚丙烯酰胺(PAGE)凝胶分析偶联产物 | 第30页 |
2.3 结果与讨论 | 第30-37页 |
2.3.1 各类合成条件的优化 | 第30-36页 |
2.3.2 各类合成方法的优缺点 | 第36-37页 |
2.4 本章小结 | 第37-39页 |
第3章 多肽与寡核苷酸偶联物分离方法的研究 | 第39-51页 |
3.1 前言 | 第39页 |
3.2 实验部分 | 第39-41页 |
3.2.1 实验仪器与试剂 | 第39-40页 |
3.2.2 反向高效液相色谱法用于POCs的分离 | 第40页 |
3.2.3 离子交换色谱法用于POCs的分离 | 第40页 |
3.2.4 凝胶电泳法用于POCs的分离 | 第40-41页 |
3.2.5 透析的方法用于POCs的分离 | 第41页 |
3.2.6 超滤的方法用于POCs的分离 | 第41页 |
3.2.7 核酸酶水解方法用于POCs的分离 | 第41页 |
3.3 结果与讨论 | 第41-50页 |
3.3.1 反向高效液相色谱方法在分离POCs中的条件分析和优化 | 第41-43页 |
3.3.2 离子交换色谱方法在分离POCs中的条件分析和优化 | 第43-45页 |
3.3.3 凝胶电泳方法在分离POCs中的条件分析和优化 | 第45-46页 |
3.3.4 透析方法分离在POCs中的条件分析和优化 | 第46页 |
3.3.5 超滤方法在分离POCs的条件分析和优化 | 第46-47页 |
3.3.6 核酸水解方法在分离POCs中的条件分析和优化 | 第47-48页 |
3.3.7 以上纯化方法的比较和总结 | 第48-50页 |
3.4 本章小结 | 第50-51页 |
第4章 基于超电荷绿色荧光蛋白与DNA酶高选择荧光检测Pb~(2+) | 第51-60页 |
4.1 前言 | 第51-52页 |
4.2 实验部分 | 第52-53页 |
4.2.1 实验仪器与试剂 | 第52页 |
4.2.2 酶切反应 | 第52页 |
4.2.3 荧光检测 | 第52-53页 |
4.2.4 变性聚丙烯酰胺(PAGE)凝胶分析酶切效率 | 第53页 |
4.3 实验结果与讨论 | 第53-58页 |
4.3.1 DNAzyme与scGFP平台检测Pb~(2+)实验原理 | 第53-54页 |
4.3.2 DNAzyme与scGFP平台用于检测Pb~(2+)的可行性分析 | 第54-55页 |
4.3.3 DNA长度的优化 | 第55页 |
4.3.4 酶切体系的优化 | 第55-56页 |
4.3.5 检测体系的优化 | 第56-57页 |
4.3.6 不同Pb~(2+)浓度的响应 | 第57页 |
4.3.7 scGFP-DNAzymes平台对Pb~(2+)响应的选择性 | 第57-58页 |
4.3.8 scGFP-DNAzymes平台用于实际样品中Pb~(2+)的检测 | 第58页 |
4.4 小结 | 第58-60页 |
结论 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-73页 |
附录 攻读学位期间所发表的学术论文目录 | 第73-74页 |
致谢 | 第74-75页 |