论文目录 | |
中文摘要 | 第1-10页 |
英文摘要 | 第10-12页 |
1 前言 | 第12-18页 |
2 材料 | 第18-19页 |
3 方法 | 第19-26页 |
3.1 传代培养 | 第19页 |
3.2 低温胁迫时细胞膜流动性的测定 | 第19-20页 |
3.2.1 细胞的准备及DPH的配制 | 第19页 |
3.2.2 荧光偏振度的测定 | 第19-20页 |
3.3 低温胁迫时钙离子水平的测定 | 第20页 |
3.3.1 培养细胞的处理 | 第20页 |
3.3.2 测定ZC-7901细胞及CBS细胞钙离子水平 | 第20页 |
3.4 低温胁迫时ATP酶活性的测定 | 第20-21页 |
3.4.1 标准曲线制作 | 第20-21页 |
3.4.2 粗酶液的提取 | 第21页 |
3.4.3 测定ATP酶活性 | 第21页 |
3.5 低温胁迫时丙二醛(MDA)含量的测定 | 第21-22页 |
3.6 超氧阴离子自由基(O_2~-)的测定 | 第22页 |
3.7 低温胁迫时超氧化物歧化酶(SOD)的变化 | 第22-23页 |
3.7.1 邻苯三酚自氧化速率的测定 | 第22页 |
3.7.2 粗酶液的提取 | 第22-23页 |
3.7.3 SOD活性的测定 | 第23页 |
3.8 低温胁迫时过氧化氢酶(CAT)活性的变化 | 第23-24页 |
3.8.1 酶液的提取 | 第23页 |
3.8.2 过氧化氢酶活性的测定 | 第23-24页 |
3.9 低温胁迫时过氧化物酶(POD)活性的变化 | 第24页 |
3.9.1 酶液的提取 | 第24页 |
3.9.2 POD活性的测定 | 第24页 |
3.10 低温胁迫时谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性的变化 | 第24-26页 |
3.10.1 酶液的提取 | 第24页 |
3.10.2 标准曲线的绘制 | 第24-25页 |
3.10.3 GSH-Px活性的测定 | 第25-26页 |
4 实验结果与分析 | 第26-43页 |
4.1 低温胁迫时草鱼及淡水白鲳细胞膜流动性的变化 | 第26-29页 |
4.1.1 低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞的P、η、LFU及细胞膜流动性 | 第26页 |
4.1.2 低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞的P、η、LFU及细胞膜流动性 | 第26-27页 |
4.1.3 低温胁迫时草鱼及淡水白鲳细胞膜流动性的变化曲线的比较 | 第27-29页 |
4.2 低温胁迫时草鱼及淡水白鲳细胞内钙离子水平的变化 | 第29-30页 |
4.2.1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞钙离子水平 | 第29页 |
4.2.2 8℃低温胁迫时淡水白鲳细胞内钙离子水平 | 第29-30页 |
4.2.3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞钙离子水平变化曲线的比较 | 第30页 |
4.3 低温胁迫时ATP酶活力变化 | 第30-33页 |
4.3.1 标准曲线 | 第30-31页 |
4.3.2 ATP酶活性 | 第31-33页 |
4.3.2.1 2-3℃低温胁迫时草鱼2C-7901细胞ATP酶活力 | 第31-32页 |
4.3.2.2 8℃低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞ATP酶活力 | 第32页 |
4.3.2.3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞ATP酶活力变化的比较 | 第32-33页 |
4.4 低温胁迫时MDA含量的变化 | 第33-34页 |
4.4.1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞内MDA含量 | 第33页 |
4.4.2 8℃低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞内MDA含量 | 第33-34页 |
4.4.3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞MDA含量变化曲线的比较 | 第34页 |
4.5 低温胁迫时超氧阴离子自由基(O_2~-)水平的变化 | 第34-36页 |
4.5.1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞内O_2~-水平 | 第34-35页 |
4.5.2 8℃低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞内O_2~-水平 | 第35页 |
4.5.3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞O_2~-水平变化曲线的比较 | 第35-36页 |
4.6 低温胁迫时SOD活性的变化 | 第36-38页 |
4.6.1 邻苯三酚自氧化时前4分钟(为线性关系)O.D_(325nm)值 | 第36页 |
4.6.2 邻苯三酚自氧化速率标准曲线 | 第36-37页 |
4.6.3 低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞SOD对邻苯三酚自氧化的抑制曲线 | 第37页 |
4.6.4 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞SOD酶活力 | 第37-38页 |
4.6.5 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞SOD酶活力的变化 | 第38页 |
4.7 低温胁迫时过氧化氢酶(CAT)活性的变化 | 第38-40页 |
4.7.1 不同时间低温处理组OD_(570nm)值以及K值 | 第38-39页 |
4.7.2 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞CAT酶活力 | 第39页 |
4.7.3 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞CAT酶活力的变化 | 第39-40页 |
4.8 低温胁迫时过氧化物酶(POD)活性的变化 | 第40-41页 |
4.8.1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞POD酶活力 | 第40页 |
4.8.2 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞POD酶活力的变化 | 第40-41页 |
4.9 低温胁迫时谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性的变化 | 第41-43页 |
4.9.1 GSH的标准曲线 | 第41-42页 |
4.9.2 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞GSH-Px酶活力 | 第42页 |
4.9.3 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞GSH-Px酶活力的变化 | 第42-43页 |
5 讨论 | 第43-55页 |
5.1 细胞膜与细胞耐寒性的关系 | 第43-44页 |
5.2 钙离子与细胞耐寒性的关系 | 第44-46页 |
5.3 寒害与ATP酶的关系 | 第46-48页 |
5.4 MDA与细胞耐寒性的关系 | 第48-49页 |
5.5 抗氧化酶活性与细胞耐寒的关系 | 第49-55页 |
5.5.1 自由基学说 | 第49-51页 |
5.5.2 超氧阴离子自由基(O_2~-)、超氧化物岐化酶与细胞耐寒性关系 | 第51-52页 |
5.5.3 过氧化氢酶(CAT)、过氧化物酶(POD)与细胞耐寒性的关系 | 第52-53页 |
5.5.4 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)与细胞耐寒性的关系 | 第53-55页 |
参考文献 | 第55-62页 |
综述: 动物耐寒机理研究进展 | 第62-80页 |