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低温胁迫对草鱼ZC-7901细胞系和淡水白鲳CBS细胞系某些细胞功能影响的研究

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低温胁迫对草鱼ZC-7901细胞系和淡水白鲳CBS细胞系某些细胞功能影响的研究
论文目录
 
中文摘要第1-10页
英文摘要第10-12页
1 前言第12-18页
2 材料第18-19页
3 方法第19-26页
3.1 传代培养第19页
3.2 低温胁迫时细胞膜流动性的测定第19-20页
3.2.1 细胞的准备及DPH的配制第19页
3.2.2 荧光偏振度的测定第19-20页
3.3 低温胁迫时钙离子水平的测定第20页
3.3.1 培养细胞的处理第20页
3.3.2 测定ZC-7901细胞及CBS细胞钙离子水平第20页
3.4 低温胁迫时ATP酶活性的测定第20-21页
3.4.1 标准曲线制作第20-21页
3.4.2 粗酶液的提取第21页
3.4.3 测定ATP酶活性第21页
3.5 低温胁迫时丙二醛(MDA)含量的测定第21-22页
3.6 超氧阴离子自由基(O_2~-)的测定第22页
3.7 低温胁迫时超氧化物歧化酶(SOD)的变化第22-23页
3.7.1 邻苯三酚自氧化速率的测定第22页
3.7.2 粗酶液的提取第22-23页
3.7.3 SOD活性的测定第23页
3.8 低温胁迫时过氧化氢酶(CAT)活性的变化第23-24页
3.8.1 酶液的提取第23页
3.8.2 过氧化氢酶活性的测定第23-24页
3.9 低温胁迫时过氧化物酶(POD)活性的变化第24页
3.9.1 酶液的提取第24页
3.9.2 POD活性的测定第24页
3.10 低温胁迫时谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性的变化第24-26页
3.10.1 酶液的提取第24页
3.10.2 标准曲线的绘制第24-25页
3.10.3 GSH-Px活性的测定第25-26页
4 实验结果与分析第26-43页
4.1 低温胁迫时草鱼及淡水白鲳细胞膜流动性的变化第26-29页
4.1.1 低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞的P、η、LFU及细胞膜流动性第26页
4.1.2 低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞的P、η、LFU及细胞膜流动性第26-27页
4.1.3 低温胁迫时草鱼及淡水白鲳细胞膜流动性的变化曲线的比较第27-29页
4.2 低温胁迫时草鱼及淡水白鲳细胞内钙离子水平的变化第29-30页
4.2.1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞钙离子水平第29页
4.2.2 8℃低温胁迫时淡水白鲳细胞内钙离子水平第29-30页
4.2.3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞钙离子水平变化曲线的比较第30页
4.3 低温胁迫时ATP酶活力变化第30-33页
4.3.1 标准曲线第30-31页
4.3.2 ATP酶活性第31-33页
4.3.2.1 2-3℃低温胁迫时草鱼2C-7901细胞ATP酶活力第31-32页
4.3.2.2 8℃低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞ATP酶活力第32页
4.3.2.3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞ATP酶活力变化的比较第32-33页
4.4 低温胁迫时MDA含量的变化第33-34页
4.4.1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞内MDA含量第33页
4.4.2 8℃低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞内MDA含量第33-34页
4.4.3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞MDA含量变化曲线的比较第34页
4.5 低温胁迫时超氧阴离子自由基(O_2~-)水平的变化第34-36页
4.5.1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞内O_2~-水平第34-35页
4.5.2 8℃低温胁迫时淡水白鲳CBS细胞内O_2~-水平第35页
4.5.3 低温胁迫草鱼细胞与淡水白鲳细胞O_2~-水平变化曲线的比较第35-36页
4.6 低温胁迫时SOD活性的变化第36-38页
4.6.1 邻苯三酚自氧化时前4分钟(为线性关系)O.D_(325nm)值第36页
4.6.2 邻苯三酚自氧化速率标准曲线第36-37页
4.6.3 低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞SOD对邻苯三酚自氧化的抑制曲线第37页
4.6.4 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞SOD酶活力第37-38页
4.6.5 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞SOD酶活力的变化第38页
4.7 低温胁迫时过氧化氢酶(CAT)活性的变化第38-40页
4.7.1 不同时间低温处理组OD_(570nm)值以及K值第38-39页
4.7.2 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞CAT酶活力第39页
4.7.3 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞CAT酶活力的变化第39-40页
4.8 低温胁迫时过氧化物酶(POD)活性的变化第40-41页
4.8.1 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞POD酶活力第40页
4.8.2 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞POD酶活力的变化第40-41页
4.9 低温胁迫时谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)活性的变化第41-43页
4.9.1 GSH的标准曲线第41-42页
4.9.2 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞GSH-Px酶活力第42页
4.9.3 2-3℃低温胁迫时草鱼ZC-7901细胞GSH-Px酶活力的变化第42-43页
5 讨论第43-55页
5.1 细胞膜与细胞耐寒性的关系第43-44页
5.2 钙离子与细胞耐寒性的关系第44-46页
5.3 寒害与ATP酶的关系第46-48页
5.4 MDA与细胞耐寒性的关系第48-49页
5.5 抗氧化酶活性与细胞耐寒的关系第49-55页
5.5.1 自由基学说第49-51页
5.5.2 超氧阴离子自由基(O_2~-)、超氧化物岐化酶与细胞耐寒性关系第51-52页
5.5.3 过氧化氢酶(CAT)、过氧化物酶(POD)与细胞耐寒性的关系第52-53页
5.5.4 谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)与细胞耐寒性的关系第53-55页
参考文献第55-62页
综述: 动物耐寒机理研究进展第62-80页

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