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离子液体萃取体系在食品分析分离中的应用

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离子液体萃取体系在食品分析分离中的应用
论文目录
 
摘要第1-6页
abstract第6-11页
第1章 绪论第11-26页
  1.1 离子液体第11-12页
    1.1.1 离子液体的定义及分类第11-12页
    1.1.2 离子液体的成因及特点第12页
  1.2 离子液体萃取体系的应用第12-15页
    1.2.1 离子液体双水相体系第12-14页
    1.2.2 离子液体微波辅助萃取第14-15页
    1.2.3 离子液体超声强化萃取第15页
    1.2.4 离子液体液液萃取第15页
  1.3 高速逆流色谱第15-17页
    1.3.1 逆流色谱分离机理第16页
    1.3.2 逆流色谱的优点第16-17页
  1.4 氯酚的研究进展第17-20页
    1.4.1 氯酚的结构和理化性质第17-18页
    1.4.2 氯酚的来源与危害第18页
    1.4.3 氯酚的样品前处理方法第18-19页
    1.4.4 氯酚的检测方法第19-20页
  1.5 溶菌酶的研究进展第20-23页
    1.5.1 溶菌酶概述第20页
    1.5.2 溶菌酶的应用第20-22页
    1.5.3 溶菌酶分离纯化方法第22-23页
  1.6 辛巴蓝活性染料CB第23-24页
    1.6.1 辛巴蓝的结构及特点第23-24页
    1.6.2 辛巴蓝的应用第24页
  1.7 选题的意义及研究内容第24-26页
    1.7.1 选题的意义第24-25页
    1.7.2 论文的主要研究内容第25-26页
第2章 离子液体双水相萃取-HPLC分析红酒中的痕量氯酚类物质第26-36页
  2.1 引言第26页
  2.2 实验部分第26-28页
    2.2.1 原料与试剂第26-27页
    2.2.2 仪器设备第27页
    2.2.3 实验方法第27-28页
  2.3 结果与讨论第28-34页
    2.3.1 离子液体的选择第28页
    2.3.2 无机盐的选择第28页
    2.3.3 双水相相图的绘制第28-29页
    2.3.4 pH的选择第29-30页
    2.3.5 双水相体系的优化第30-31页
    2.3.6 方法学验证第31-33页
    2.3.7 实际样品的分析第33-34页
  2.4 本章小结第34-36页
第3章 离子液体调节的双水相体系逆流色谱分离鸡蛋清溶菌酶第36-49页
  3.1 引言第36页
  3.2 实验部分第36-40页
    3.2.1 原料与试剂第36-37页
    3.2.2 仪器设备第37-38页
    3.2.3 实验方法第38-40页
  3.3 结果与讨论第40-47页
    3.3.1 PEG1000-磷酸盐双水相基础体系的优化第40-42页
    3.3.2 离子液体-双水相体系的优化第42-44页
    3.3.3 IL对溶菌酶活性的影响第44页
    3.3.4 逆流色谱分离鸡蛋清蛋白质第44-46页
    3.3.5 AutoDock Vina软件分析离子液体与蛋白的结合能第46-47页
  3.4 本章小结第47-49页
第4章 CB染料修饰的离子液体[C4MIM]3[CB] 萃取分离鸡蛋清溶菌酶第49-63页
  4.1 引言第49页
  4.2 实验部分第49-55页
    4.2.1 原料与试剂第49-50页
    4.2.2 仪器设备第50-51页
    4.2.3 实验方法第51-55页
  4.3 结果与讨论第55-62页
    4.3.1 蛋白质溶液pH值对蛋白质萃取率的影响第55-56页
    4.3.2 [C4MIM]3CB浓度对蛋白质萃取率的影响第56-57页
    4.3.3 振荡时间对溶菌酶萃取率的影响第57-58页
    4.3.4 KCl浓度对溶菌酶萃取率的影响第58页
    4.3.5 反萃取溶液pH对溶菌酶萃取率的影响第58-59页
    4.3.6 蛋清粉样品溶菌酶含量的测定第59页
    4.3.7 蛋清粉样品的放大实验第59-60页
    4.3.8 AutoDock Vina分析[C4MIM]3CB与蛋白的结合能第60-62页
  4.4 本章小结第62-63页
第5章 结论与展望第63-65页
  5.1 主要结论第63页
  5.2 论文的创新点第63-64页
  5.3 展望第64-65页
参考文献第65-73页
在学期间发表的学术论文与研究成果第73-74页
致谢第74页

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