论文目录 | |
摘要 | 第1-9页 |
ABSTRACT | 第9-11页 |
英文缩略符及中英文对照表 | 第11-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-19页 |
引言 | 第13页 |
1. 植物对养分(磷)的适应机制研究 | 第13-14页 |
2. 植物根系形态构造发育的研究 | 第14-16页 |
3. 响应低磷信号重要基因的研究 | 第16-17页 |
4. LPR基因的相关研究 | 第17-19页 |
第二章 水稻中OsLPR1的生物信息学与表达模式分析 | 第19-38页 |
引言 | 第19-20页 |
1. 试验材料 | 第20页 |
2. 试验方法 | 第20-29页 |
2.1 OsLPR1的生物信息学分析 | 第20-22页 |
2.1.1 OsLPR1基因结构分析 | 第20-21页 |
2.1.2 OsLPR1蛋白结构域分析 | 第21页 |
2.1.3 不同物种中LPR同源基因的进化树构建 | 第21-22页 |
2.1.4 OsLPR1基因芯片数据分析 | 第22页 |
2.2 OsLPR1的表达模式分析 | 第22-27页 |
2.2.1 植物生长条件与采样 | 第22页 |
2.2.2 植物基因组DNA提取 | 第22-23页 |
2.2.3 植物总RNA提取、cDNA合成及荧光定量PCR方法 | 第23页 |
2.2.4 OsLPR1组织定位载体的构建 | 第23-24页 |
2.2.5 农杆菌介导的水稻转化 | 第24-27页 |
2.3 亚细胞定位 | 第27-29页 |
2.3.1 载体构建 | 第27-28页 |
2.3.2 农杆菌介导转化烟草 | 第28-29页 |
3. 结果与分析 | 第29-36页 |
3.1 OsLPR1基因结构分析 | 第29页 |
3.2 LPR同源基因的进化树分析 | 第29-30页 |
3.3 OsLPR1蛋白结构域分析 | 第30-31页 |
3.4 水稻中OsLPR1基因芯片数据分析 | 第31-32页 |
3.5 OsLPR1在水稻中的时空表达 | 第32-36页 |
3.5.1 荧光定量PCR检测OsLPR1在水稻中的时空表达 | 第32-34页 |
3.5.2 组织定位材料检测OsLPR1在水稻中的时空表达 | 第34页 |
3.5.3 OsLPR1的亚细胞定位 | 第34-36页 |
4. 讨论 | 第36-38页 |
第三章 OsLPR1超表达、RNAi和突变体材料创制以及遗传背景的鉴定 | 第38-49页 |
引言 | 第38页 |
1. 试验材料 | 第38-39页 |
2. 实验方法 | 第39-44页 |
2.1 载体的构建 | 第39-43页 |
2.1.1 OsLPR1超表达载体构建 | 第39-40页 |
2.1.2 OsLPR1 RNAi载体构建 | 第40-42页 |
2.1.3 OsLPR1突变体载体构建 | 第42-43页 |
2.2 农杆菌介导的水稻转化 | 第43页 |
2.3 植物总RNA提取、cDNA合成及RT-PCR反应 | 第43-44页 |
2.4 植物基因组DNA提取与Southern鉴定拷贝数 | 第44页 |
3. 实验结果 | 第44-47页 |
3.1 OsLPR1转基因材料阳性率统计 | 第44-45页 |
3.2 OsLPR1转基因材料表达效果和拷贝数鉴定 | 第45-46页 |
3.3 OsLPR1 Spacer的特异性分析以及突变体材料的获得 | 第46-47页 |
4. 讨论 | 第47-49页 |
第四章 OsLPR1超表达及部分沉默对水稻生长发育及养分利用的影响 | 第49-65页 |
引言 | 第49页 |
1. 试验材料 | 第49页 |
2. 试验方法 | 第49-50页 |
2.1 植物生长条件 | 第49-50页 |
2.2 植株可提取磷含量的测定 | 第50页 |
2.3 植株全磷含量的测定 | 第50页 |
2.4 植株微量元素的测定 | 第50页 |
3. 结果与分析 | 第50-62页 |
3.1 OsLPR1超表达、RNAi对水稻种子萌发的影响 | 第50-53页 |
3.2 OsLPR1超表达、RNAi对水稻苗期株高根长的影响 | 第53-55页 |
3.3 OsLPR1超表达、RNAi对水稻苗期生物量的影响 | 第55-57页 |
3.4 OsLPR1超表达、RNAi对水稻苗期养分利用的影响 | 第57-62页 |
4. 讨论 | 第62-65页 |
全文结论 | 第65-67页 |
创新点 | 第67-69页 |
参考文献 | 第69-75页 |
附录 | 第75-97页 |
在读期间发表的论文 | 第97-99页 |
致谢 | 第99页 |