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甜菜夜蛾与小白菜硫苷的相互影响及Bra008132基因的初步功能研究

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甜菜夜蛾与小白菜硫苷的相互影响及Bra008132基因的初步功能研究
论文目录
 
摘要第1-5页
ABSTRACT第5-9页
缩略词第9-10页
1 文献综述第10-20页
  1.1 硫代葡萄糖苷第10-17页
    1.1.1 硫代葡萄糖苷的结构与分类第10页
    1.1.2 硫代葡萄糖苷的合成第10-14页
      1.1.2.1 氨基酸侧链的延伸第10-13页
      1.1.2.2 核心结构的形成第13-14页
      1.1.2.3 侧链的次级修饰第14页
    1.1.3 硫代葡萄糖苷的转运第14-15页
    1.1.4 硫代葡萄糖苷的降解第15页
    1.1.5 硫代葡萄糖苷的生物学功能第15-17页
      1.1.5.1 参与植物防御反应第15-16页
      1.1.5.2 赋予不同风味第16-17页
      1.1.5.3 抗营养作用第17页
      1.1.5.4 抗癌第17页
  1.2 SOT蛋白研究进展第17-18页
  1.3 甜菜夜蛾的分布及其危害第18-19页
  1.4 本研究的目的与意义第19-20页
2 黑油筒不同叶期以及不同叶位硫苷含量第20-25页
  2.1 材料与方法第20-21页
    2.1.1 实验材料第20页
    2.1.2 仪器与试剂第20页
    2.1.3 黑油筒生长条件第20页
    2.1.4 取样第20-21页
    2.1.5 硫苷的提取及HPLC检测第21页
  2.2 结果第21-23页
    2.2.1 不同叶期硫苷含量第21页
    2.2.2 八叶期黑油筒不同叶位硫苷含量第21-23页
  2.3 讨论第23-25页
3 甜菜夜蛾与黑油筒硫苷的相互影响第25-33页
  3.1 材料与方法第25-28页
    3.1.1 实验材料第25页
    3.1.2 仪器与试剂第25-26页
    3.1.3 黑油筒生长条件第26页
    3.1.4 接虫方法第26页
    3.1.5 取样第26页
    3.1.6 硫苷的提取及HPLC检测第26页
    3.1.7 RNA的提取及反转录第26-27页
    3.1.8 谷胱甘肽转移酶第27页
    3.1.9 硫苷相关基因的定量分析第27-28页
      3.1.9.1 总RNA反转录为cDNA第27页
      3.1.9.2 硫苷相关基因的定量分析第27-28页
  3.2 结果第28-31页
    3.2.1 甜菜夜蛾取食对硫苷含量的影响第28-29页
    3.2.2 硫苷相关基因的定量分析第29页
    3.2.3 谷胱甘肽转移酶的活性变化第29-31页
  3.3 讨论第31-33页
4 小白菜基因Bra008132的克隆与表达分析第33-45页
  4.1 材料与方法第33-39页
    4.1.1 植物材料第33页
    4.1.2 主要实验试剂第33-34页
    4.1.3 基因组DNA的提取第34页
    4.1.4 植物总RNA的提取第34页
    4.1.5 小白菜Bra008132基因序列的扩增第34-35页
    4.1.6 相关核苷酸和氨基酸序列分析第35-36页
    4.1.7 qRT-PCR分析白菜Bra008132的表达第36页
    4.1.8 启动子-GUS报告系统分析白菜Bra008132的表达第36-38页
      4.1.8.1 启动子片段的克隆第36-37页
      4.1.8.2 启动子顺式调控元件分析第37页
      4.1.8.3 启动子-GUS融合表达载体的构建第37页
      4.1.8.4 启动子-GUS融合表达载体转化农杆菌第37-38页
      4.1.8.5 农杆菌介导启动子-GUS融合表达载体转化拟南芥第38页
      4.1.8.6 转基因拟南芥的筛选第38页
    4.1.9 亚细胞定位载体的构建第38-39页
  4.2 结果第39-44页
    4.2.1 小白菜Bra008132基因及其启动子的克隆与相关分析第39-42页
    4.2.2 Bra008132基因在黑油筒小白菜中的时空表达模式第42-43页
    4.2.3 启动子载体构建第43-44页
  4.3 讨论第44-45页
全文结论第45-46页
附表第46-47页
参考文献第47-59页
致谢第59页

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