论文目录 | |
摘要 | 第1-5页 |
ABSTRACT | 第5-9页 |
缩略词 | 第9-10页 |
1 文献综述 | 第10-20页 |
1.1 硫代葡萄糖苷 | 第10-17页 |
1.1.1 硫代葡萄糖苷的结构与分类 | 第10页 |
1.1.2 硫代葡萄糖苷的合成 | 第10-14页 |
1.1.2.1 氨基酸侧链的延伸 | 第10-13页 |
1.1.2.2 核心结构的形成 | 第13-14页 |
1.1.2.3 侧链的次级修饰 | 第14页 |
1.1.3 硫代葡萄糖苷的转运 | 第14-15页 |
1.1.4 硫代葡萄糖苷的降解 | 第15页 |
1.1.5 硫代葡萄糖苷的生物学功能 | 第15-17页 |
1.1.5.1 参与植物防御反应 | 第15-16页 |
1.1.5.2 赋予不同风味 | 第16-17页 |
1.1.5.3 抗营养作用 | 第17页 |
1.1.5.4 抗癌 | 第17页 |
1.2 SOT蛋白研究进展 | 第17-18页 |
1.3 甜菜夜蛾的分布及其危害 | 第18-19页 |
1.4 本研究的目的与意义 | 第19-20页 |
2 黑油筒不同叶期以及不同叶位硫苷含量 | 第20-25页 |
2.1 材料与方法 | 第20-21页 |
2.1.1 实验材料 | 第20页 |
2.1.2 仪器与试剂 | 第20页 |
2.1.3 黑油筒生长条件 | 第20页 |
2.1.4 取样 | 第20-21页 |
2.1.5 硫苷的提取及HPLC检测 | 第21页 |
2.2 结果 | 第21-23页 |
2.2.1 不同叶期硫苷含量 | 第21页 |
2.2.2 八叶期黑油筒不同叶位硫苷含量 | 第21-23页 |
2.3 讨论 | 第23-25页 |
3 甜菜夜蛾与黑油筒硫苷的相互影响 | 第25-33页 |
3.1 材料与方法 | 第25-28页 |
3.1.1 实验材料 | 第25页 |
3.1.2 仪器与试剂 | 第25-26页 |
3.1.3 黑油筒生长条件 | 第26页 |
3.1.4 接虫方法 | 第26页 |
3.1.5 取样 | 第26页 |
3.1.6 硫苷的提取及HPLC检测 | 第26页 |
3.1.7 RNA的提取及反转录 | 第26-27页 |
3.1.8 谷胱甘肽转移酶 | 第27页 |
3.1.9 硫苷相关基因的定量分析 | 第27-28页 |
3.1.9.1 总RNA反转录为cDNA | 第27页 |
3.1.9.2 硫苷相关基因的定量分析 | 第27-28页 |
3.2 结果 | 第28-31页 |
3.2.1 甜菜夜蛾取食对硫苷含量的影响 | 第28-29页 |
3.2.2 硫苷相关基因的定量分析 | 第29页 |
3.2.3 谷胱甘肽转移酶的活性变化 | 第29-31页 |
3.3 讨论 | 第31-33页 |
4 小白菜基因Bra008132的克隆与表达分析 | 第33-45页 |
4.1 材料与方法 | 第33-39页 |
4.1.1 植物材料 | 第33页 |
4.1.2 主要实验试剂 | 第33-34页 |
4.1.3 基因组DNA的提取 | 第34页 |
4.1.4 植物总RNA的提取 | 第34页 |
4.1.5 小白菜Bra008132基因序列的扩增 | 第34-35页 |
4.1.6 相关核苷酸和氨基酸序列分析 | 第35-36页 |
4.1.7 qRT-PCR分析白菜Bra008132的表达 | 第36页 |
4.1.8 启动子-GUS报告系统分析白菜Bra008132的表达 | 第36-38页 |
4.1.8.1 启动子片段的克隆 | 第36-37页 |
4.1.8.2 启动子顺式调控元件分析 | 第37页 |
4.1.8.3 启动子-GUS融合表达载体的构建 | 第37页 |
4.1.8.4 启动子-GUS融合表达载体转化农杆菌 | 第37-38页 |
4.1.8.5 农杆菌介导启动子-GUS融合表达载体转化拟南芥 | 第38页 |
4.1.8.6 转基因拟南芥的筛选 | 第38页 |
4.1.9 亚细胞定位载体的构建 | 第38-39页 |
4.2 结果 | 第39-44页 |
4.2.1 小白菜Bra008132基因及其启动子的克隆与相关分析 | 第39-42页 |
4.2.2 Bra008132基因在黑油筒小白菜中的时空表达模式 | 第42-43页 |
4.2.3 启动子载体构建 | 第43-44页 |
4.3 讨论 | 第44-45页 |
全文结论 | 第45-46页 |
附表 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-59页 |
致谢 | 第59页 |