论文目录 | |
摘要 | 第1-10页 |
ABSTRACT | 第10-13页 |
符号及缩略语 | 第13-14页 |
引言 | 第14-15页 |
第一部分 文献综述 | 第15-33页 |
第一章 环境内分泌干扰物的研究 | 第15-19页 |
1.1 环境内分泌干扰物的概念 | 第15页 |
1.2 环境内分泌干扰物的分类及来源 | 第15-16页 |
1.3 环境内分泌干扰物的致毒机理 | 第16页 |
1.4 环境内分泌干扰物的生殖毒性 | 第16-17页 |
1.5 环境内分泌干扰物的防护措施 | 第17-19页 |
第二章 双酚A的研究现状 | 第19-25页 |
2.1 双酚A的化学结构及理化性质 | 第19页 |
2.2 双酚A在生产实践中的使用现状 | 第19-20页 |
2.3 双酚A的一般毒性作用 | 第20页 |
2.4 双酚A毒性的研究进展 | 第20-25页 |
2.4.1 双酚A生殖毒性的研究现状 | 第20-21页 |
2.4.2 双酚A改变了表观遗传修饰水平 | 第21-22页 |
2.4.3 双酚A对动物机体细胞凋亡的影响 | 第22-25页 |
第三章 DEHP及其活性代谢产物MEHP的研究现状 | 第25-29页 |
3.1 DEHP及MEHP的化学结构及理化性质 | 第25-26页 |
3.2 DEHP及MEHP的应用现状 | 第26页 |
3.3 DEHP及MEHP的一般毒性效应 | 第26页 |
3.4 DEHP及MEHP的生殖毒性 | 第26-29页 |
第四章 卵母细胞成熟及质量的判定 | 第29-33页 |
4.1 哺乳动物卵母细胞减数分裂的过程 | 第29-30页 |
4.2 卵母细胞成熟质量的判断标准 | 第30-33页 |
第二部分 试验研究 | 第33-77页 |
第五章 双酚A对猪卵母细胞体外成熟的影响研究 | 第33-61页 |
5.1 引言 | 第33-34页 |
5.2 实验材料与方法 | 第34-46页 |
5.2.1 试剂和抗体 | 第34-35页 |
5.2.2 试验中的主要仪器设备 | 第35-36页 |
5.2.3 抗体和试剂的配制 | 第36-39页 |
5.2.3.1 抗体的配制 | 第36-37页 |
5.2.3.2 试剂的配制 | 第37-39页 |
5.2.4 试验方法 | 第39-46页 |
5.3 数据分析 | 第46页 |
5.4 结果 | 第46-58页 |
5.4.1 双酚A体外处理猪卵母细胞导致极体排出失败 | 第46-47页 |
5.4.2 双酚A处理猪卵母细胞延缓了细胞周期 | 第47-49页 |
5.4.3 双酚A处理猪卵母细胞影响了纺锤体的构型 | 第49-50页 |
5.4.4 双酚A通过调控MAPK的磷酸化水平影响减数分裂纺锤体的组装 | 第50-51页 |
5.4.5 双酚A处理猪卵母细胞导致减数分裂过程中微丝表达异常 | 第51-52页 |
5.4.6 双酚A处理猪卵母细胞导致表观修饰水平改变 | 第52-55页 |
5.4.7 双酚A处理猪卵母细胞诱导了氧化应激反应 | 第55-56页 |
5.4.8 双酚A处理猪卵母细胞导致早期凋亡和自噬效应 | 第56-58页 |
5.5 讨论 | 第58-61页 |
第六章 DEHP及其代谢产物MEHP对猪卵母细胞体外成熟的影响研究 | 第61-77页 |
6.1 引言 | 第61-62页 |
6.2 试验材料与方法 | 第62页 |
6.2.1 抗体与试剂 | 第62页 |
6.2.2 主要仪器设备 | 第62页 |
6.2.3 试验方法 | 第62页 |
6.2.4 抗体和试剂的配制 | 第62页 |
6.3 数据分析 | 第62页 |
6.4 结果 | 第62-74页 |
6.4.1 DEHP对猪卵母细胞卵丘细胞的扩散及极体排出率没有影响 | 第62-63页 |
6.4.2 MEHP处理猪卵母细胞导致极体排出失败 | 第63-65页 |
6.4.3 MEHP处理猪卵母细胞延缓了细胞周期 | 第65-66页 |
6.4.4 MEHP处理猪卵母细胞影响了细胞骨架 | 第66-67页 |
6.4.5 MEHP处理猪卵母细胞影响了减数分裂过程中微丝的表达 | 第67-68页 |
6.4.6 MEHP处理猪卵母细胞导致减数分裂过程中表观遗传修饰作用被改变 | 第68-70页 |
6.4.7 MEHP处理猪卵母细胞诱导了氧化应激 | 第70-72页 |
6.4.8 MEHP处理猪卵母细胞诱导早期凋亡和自噬作用 | 第72-74页 |
6.5 讨论 | 第74-77页 |
全文结论 | 第77-79页 |
创新点 | 第79-81页 |
攻读硕士学位期间发表的论文 | 第81-83页 |
参考文献 | 第83-91页 |
致谢 | 第91页 |