论文目录 | |
摘要 | 第1-9页 |
ABSTRACT | 第9-11页 |
引言 | 第11-12页 |
上篇 文献综述 植物病原卵菌及其效应因子的研究进展 | 第12-25页 |
1 植物病原卵菌的生活史及侵染 | 第13-15页 |
1.1 疫霉菌生活史 | 第13-14页 |
1.2 疫霉菌的侵染机制 | 第14-15页 |
2 疫霉菌侵染的病害 | 第15-18页 |
2.1 辣椒疫霉(phytophthora capsici)病害 | 第16-17页 |
2.2 辣椒疫霉的病害循环 | 第17-18页 |
3 病原卵菌效应因子的分类 | 第18-23页 |
3.1 质外体效应因子(Apoplastic effectors) | 第19-20页 |
3.2 细胞质效应因子(Cytoplasmic effectors) | 第20-23页 |
4 病原卵菌与植物的协同进化 | 第23-24页 |
展望 | 第24-25页 |
下篇 研究内容 | 第25-69页 |
第一章 PCRXLR207的功能与作用机制研究 | 第27-53页 |
1 材料和方法 | 第31-44页 |
1.1 供试菌株、植物的培养及保存条件 | 第31页 |
1.2 培养基及配制方法 | 第31-33页 |
1.3 主要试剂 | 第33-34页 |
1.4 辣椒疫霉基因组DNA提取(CTAB-SDS法) | 第34页 |
1.5 拟南芥总RNA的提取及反转录 | 第34-35页 |
1.6 表达载体的构建 | 第35-39页 |
1.7 大肠杆菌感受态的制备及转化方法 | 第39-40页 |
1.8 农杆菌感受态的制备及转化方法 | 第40-41页 |
1.9 PcRxLR207的功能初步鉴定 | 第41-42页 |
1.10 PcRxLR207的亚细胞定位 | 第42页 |
1.11 酵母双杂交鉴定PcRxLR207的植物靶标基因 | 第42-44页 |
1.12 双分子荧光互补鉴定PcRxLR207的植物靶标基因 | 第44页 |
1.13 RBPs与Mito tracker的亚细胞共定位 | 第44页 |
2 结果与分析 | 第44-51页 |
2.1 瞬时表达PcRxLR207能引起烟草叶片细胞死亡 | 第44-45页 |
2.2 PcRxLR207分布在细胞质中 | 第45-46页 |
2.3 利用酵母双杂交系统钓取PcRxLR207的拟植物靶标基因为RBPs | 第46页 |
2.4 PcRxLR207和RBPs在酵母双杂交系统中均无自激活活性 | 第46-48页 |
2.5 酵母双杂交系统验证PcRxLR207与RBPs互作 | 第48-49页 |
2.6 双分子荧光互补系统验证RBPs为PcRxLR207的植物靶标基因 | 第49-50页 |
2.7 RBPs在细胞核和细胞质中都有分布 | 第50-51页 |
3 讨论 | 第51-53页 |
第二章 PCRXLR103的功能与作用机制研究 | 第53-69页 |
1 材料与方法 | 第56-62页 |
1.1 供试菌株、植物及培养条件 | 第56页 |
1.2 培养基及配制方法 | 第56页 |
1.3 主要试剂 | 第56页 |
1.4 拟南芥总RNA的提取及反转录 | 第56页 |
1.5 质粒提取的方法(碱式抽提法) | 第56-57页 |
1.6 表达载体的构建 | 第57-59页 |
1.7 大肠杆菌感受态的制备及转化方法 | 第59页 |
1.8 农杆菌感受态的制备及转化方法 | 第59页 |
1.9 PcRxLR103的毒性测定 | 第59-60页 |
1.10 PcRxLR103的表达模式分析 | 第60-61页 |
1.11 拟南芥的稳定转化技术 | 第61页 |
1.12 酵母双杂交筛选鉴定PcRxLR103的植物靶标基因 | 第61-62页 |
1.13 双分子荧光互补鉴定PcRxLR103的植物靶标基因 | 第62页 |
2 结果与分析 | 第62-67页 |
2.1 在本氏烟中表达PcRxLR103能够促进辣椒疫霉菌的侵染 | 第62页 |
2.2 PcRxLR103在侵染阶段诱导表达 | 第62-63页 |
2.3 PcRxLR103能够在本氏烟叶片中诱导细胞死亡 | 第63-64页 |
2.4 PcRxLR103转基因拟南芥的制备 | 第64-65页 |
2.5 酵母双杂交系统鉴定PcRxLR103的植物靶标基因 | 第65-66页 |
2.6 双分子荧光系统鉴定PcRxLR103的植物靶标基因 | 第66-67页 |
3 讨论 | 第67-69页 |
参考文献 | 第69-81页 |
全文总结与创新点 | 第81-83页 |
硕士期间发表的学术论文 | 第83-85页 |
致谢 | 第85页 |