论文目录 | |
摘要 | 第1-9页 |
ABSTRACT | 第9-12页 |
缩略词表 | 第12-13页 |
第一章 文献综述 | 第13-23页 |
1 植物开花的分子机制 | 第13-19页 |
1.1 赤霉素途径 | 第13-15页 |
1.2 自主途径 | 第15页 |
1.3 年龄途径 | 第15页 |
1.4 光周期途径 | 第15-17页 |
1.5 春化途径 | 第17页 |
1.6 环境温度途径 | 第17-19页 |
2 EMF基因的研究进展 | 第19-21页 |
2.1 EMF基因的分子结构特性 | 第19-20页 |
2.2 EMF基因的功能和作用机理 | 第20-21页 |
3 本研究的目的及意义 | 第21-23页 |
第二章 基于RNA-SEQ的'神马'与'低温神马'不同光周期花芽分化的转录组分析 | 第23-57页 |
1 材料与方法 | 第24-31页 |
1.1 供试材料 | 第24页 |
1.2 药品和仪器 | 第24-25页 |
1.3 试验方法 | 第25-31页 |
1.3.1 材料的光周期处理与取样 | 第25页 |
1.3.2 基因组DNA的提取 | 第25页 |
1.3.3 '低温神马'与'神马'的SRAP鉴定 | 第25-27页 |
1.3.4 总RNA的提取 | 第27页 |
1.3.5 内源赤霉素含量的测定 | 第27页 |
1.3.6 转录组数据分析 | 第27-30页 |
1.3.7 实时荧光定量实验(Quantitative real-time PCR,qPCR) | 第30-31页 |
2 结果与分析 | 第31-53页 |
2.1 '神马'和'低温神马'在不同光周期下开花情况不同 | 第31-32页 |
2.2 '神马'和'低温神马'的分子鉴定 | 第32页 |
2.3 测序产量统计 | 第32-33页 |
2.4 De novo组装结果 | 第33页 |
2.5 Unigene功能注释结果 | 第33-39页 |
2.5.1 NR注释 | 第34-35页 |
2.5.2 KEGG注释 | 第35-36页 |
2.5.3 COG注释 | 第36-37页 |
2.5.4 GO功能注释 | 第37-39页 |
2.6 '神马'和'低温神马'不同光周期花芽分化转录组比较分析 | 第39-50页 |
2.6.1 Unigene表达差异分析 | 第39-40页 |
2.6.2 差异Unigene的GO分析 | 第40-45页 |
2.6.3 开花相关基因的差异表达 | 第45-46页 |
2.6.4 转录因子的表达差异 | 第46-50页 |
2.7 差异显著表达基因的qPCR验证 | 第50-52页 |
2.8 赤霉素处理验证 | 第52-53页 |
3 讨论 | 第53-57页 |
3.1 光周期路径和赤霉素路径共同调控短日照条件下菊花的花芽分化和开花 | 第53-54页 |
3.2 GA通过诱导CmFTL和SOC1的表达促进长日照条件下菊花的花芽分化和开花 | 第54-55页 |
3.3 参与花芽分化和开花的转录因子家族 | 第55页 |
3.4 关于CmEMF基因功能的猜测 | 第55-57页 |
第三章 菊花'神马'EMF2基因表达分析和瞬时转化再生体系的建立 | 第57-71页 |
1 材料与方法 | 第58-62页 |
1.1 实验材料 | 第58页 |
1.2 试剂与仪器 | 第58页 |
1.3 试验方法 | 第58-62页 |
1.3.1 菊花CmEMF2基因的ORF验证 | 第58-60页 |
1.3.2 序列分析及系统进化树构建 | 第60页 |
1.3.3 菊花CmEMF基因的表达特性分析 | 第60页 |
1.3.4 CmEMF2.1基因的亚细胞定位分析 | 第60-61页 |
1.3.5 菊花'神马'瞬时转化再生体系的建立 | 第61-62页 |
2 结果与分析 | 第62-69页 |
2.1 EMF2.1和EMF2.2的ORF验证 | 第62-63页 |
2.2 序列分析和比对 | 第63-65页 |
2.3 菊花CmEMF2基因在不同组织的表达模式 | 第65页 |
2.4 CmEMF2对长日照和短日照的响应模式 | 第65-66页 |
2.5 CmEMF2在菊花生长发育过程中的表达情况 | 第66页 |
2.6 CmEMF2.1基因的亚细胞定位分析 | 第66-68页 |
2.7 瞬时转化再生植株的获得 | 第68-69页 |
3 讨论 | 第69-71页 |
全文结论 | 第71-73页 |
创新点 | 第73-75页 |
参考文献 | 第75-85页 |
附录 | 第85-95页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第95-97页 |
致谢 | 第97-98页 |