论文目录 | |
| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 中英文缩略表 | 第11-12页 |
| 20 种常见氨基酸的英文及缩写 | 第12-13页 |
| 引言 | 第13-14页 |
| 第一篇 文献综述 | 第14-38页 |
| 第一章 猪饲料日粮氮营养素的应用现状 | 第14-20页 |
| 1 日粮氮营养素的重要性 | 第14-15页 |
| 2 国内外养猪生产对于氮营养素利用的研究进展 | 第15-16页 |
| 3 猪饲粮氮营养素存在的问题:包括来源、浓度高低和对环境等影响 | 第16-18页 |
| 参考文献 | 第18-20页 |
| 第二章 氮营养素对猪肠道黏膜营养吸收功能的影响 | 第20-30页 |
| 1 氮营养素在小肠吸收利用机制的研究进展 | 第20-21页 |
| 2 肠道黏膜氨基酸的吸收感应机制 | 第21-23页 |
| 3 肠道黏膜葡萄糖的吸收感应机制 | 第23-25页 |
| 4 氮营养素的调节对猪肠道吸收营养物质的影响 | 第25-26页 |
| 参考文献 | 第26-30页 |
| 第三章 氮营养素对肠黏膜屏障功能的影响 | 第30-38页 |
| 1 猪肠道黏膜屏障功能 | 第30-32页 |
| 2 氮营养素对猪肠上皮黏膜结构屏障的影响研究进展 | 第32页 |
| 3 氮营养素对猪肠黏膜免疫功能的影响研究进展 | 第32-34页 |
| 参考文献 | 第34-38页 |
| 第二篇 试验研究 | 第38-90页 |
| 第四章 不同氮营养素水平日粮对猪肠道黏膜屏障和营养吸收功能的影响的研究 | 第38-56页 |
| 1 材料与方法 | 第38-45页 |
| 1.1 试验动物与日粮 | 第39-41页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第41-42页 |
| 1.3 抗体 | 第42页 |
| 1.4 荧光定量PCR法检测空肠黏膜中Muc1 mRNA、Muc2 mRNA的水平 | 第42-44页 |
| 1.5 Western-Blot蛋白印迹检测肠黏膜氨基酸转运载体和紧密连接蛋白的表达水平 | 第44页 |
| 1.6 HE染色观察肠道形态 | 第44-45页 |
| 1.7 希夫反应法(PAS法)显示空肠杯状细胞 | 第45页 |
| 1.8 数据处理 | 第45页 |
| 2 试验结果 | 第45-52页 |
| 2.1 不同粗蛋白水平日粮对猪肠道形态和杯状细胞数目的影响 | 第45-46页 |
| 2.2 不同粗蛋白水平日粮对肠黏膜黏蛋白mRNA和紧密连接蛋白表达水平的影响 | 第46-49页 |
| 2.3 不同粗蛋白水平日粮对猪肠黏膜上氨基酸转运载体表达量的影响 | 第49-51页 |
| 2.4 不同粗蛋白水平日粮对猪肠黏膜上葡萄糖转运载体表达量的影响 | 第51-52页 |
| 3 讨论 | 第52-54页 |
| 参考文献 | 第54-56页 |
| 第五章 不同浓度精氨酸对IPEC-J2细胞屏障及其营养吸收功能的影响的研究 | 第56-70页 |
| 1 材料与方法 | 第57-60页 |
| 1.1 细胞株 | 第57页 |
| 1.2 主要试剂和仪器 | 第57-58页 |
| 1.3 细胞培养 | 第58页 |
| 1.5 荧光定量PCR检测IPEC-J2中Muc1、ASCT1、EAAT3和CAT1 mRNA表达水平 | 第58-59页 |
| 1.6 Western-Blot检测IPEC-J2细胞葡萄糖转运载体和紧密连接蛋白的表达水平 | 第59-60页 |
| 1.7 葡萄糖测定试剂盒检测IPEC-J2细胞培养基中葡萄糖含量 | 第60页 |
| 1.8 L-8900高效氨基酸分析仪检测IPEC-J2细胞培养基中氨基酸含量 | 第60页 |
| 1.9 数据处理 | 第60页 |
| 2 试验结果 | 第60-66页 |
| 2.1 不同浓度精氨酸对IPEC-J2细胞紧密连接和粘蛋白表达量的影响 | 第61-62页 |
| 2.2 不同浓度精氨酸对IPEC-J2细胞氨基酸转运载体表达量的影响 | 第62-63页 |
| 2.3 不同浓度精氨酸对IPEC-J2细胞氨基酸吸收水平的影响 | 第63-65页 |
| 2.4 不同浓度精氨酸对IPEC-J2细胞葡萄糖转运载体蛋白和葡萄糖吸收水平的影响 | 第65-66页 |
| 3 讨论 | 第66-68页 |
| 参考文献 | 第68-70页 |
| 第六章 氨基酸转运载体CAT1调节肠上皮细胞EGFR信号通路的初步探究 | 第70-90页 |
| 1 材料与方法 | 第70-76页 |
| 1.1 细胞株 | 第70页 |
| 1.2 抗体和质粒 | 第70-71页 |
| 1.3 主要试剂和仪器 | 第71页 |
| 1.4 pLVX-AcGFP1-CAT1和pLVX-AcGFP1-Control载体的构建 | 第71-72页 |
| 1.5 pLVX-sh-CAT1和pLVX-sh-Control载体的构建及慢病毒的包装 | 第72-75页 |
| 1.6 Western-Blot检测IPEC-J2中CAT1、EGFR和ERK的表达水平 | 第75页 |
| 1.7 高效液相色谱检测IPEC-J2的精氨酸吸收水平 | 第75-76页 |
| 1.8 流式检测干扰CAT1后IPEC-J2的细胞凋亡水平 | 第76页 |
| 1.9 数据处理 | 第76页 |
| 2 试验结果 | 第76-86页 |
| 2.1 pLVX-AcGFP1-CAT1载体构建和慢病毒包装结果 | 第76-81页 |
| 2.2 pLVX-sh-CAT1载体的构建和慢病毒包装结果 | 第81-82页 |
| 2.3 慢病毒转染IPEC-J2细胞后干扰和过表达CAT1的效果 | 第82页 |
| 2.4 干扰CAT1表达对IPEC-J2凋亡、吸收葡萄糖和精氨酸的影响 | 第82-85页 |
| 2.5 过表达和干扰CAT1转运载体对EGFR和ERK表达量的影响 | 第85-86页 |
| 3 讨论 | 第86-88页 |
| 参考文献 | 第88-90页 |
| 全文结论 | 第90-92页 |
| 论文发表情况 | 第92-94页 |
| 致谢 | 第94页 |
