论文目录 | |
摘要 | 第1-7
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Abstract | 第7-11
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第一章 综述 | 第11-18
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· 白藜芦醇 | 第11-15
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· 生化特性及其在植物中的分布与存在形式 | 第11
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· 生物合成途径 | 第11-12
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· 作为植物雌激素而起到预防癌症的作用 | 第12-13
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· 调节癌症第一、二阶段的酶 | 第13
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· 保护心血管系统 | 第13-14
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· 白藜芦醇与炎症 | 第14-15
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· 白藜芦醇合酶 | 第15-18
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· 白藜芦醇合酶的酶学性质 | 第15
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· 白藜芦醇合酶与查尔酮合酶 | 第15-16
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· 白藜芦醇合酶基因的诱导表达 | 第16
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· 白藜芦醇合酶基因的转基因研究 | 第16-18
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第二章 材料与方法 | 第18-27
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· 材料 | 第18-19
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· 方法 | 第19-27
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· 基本的实验方法 | 第19
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· RNA的提取(CTAB法结合酸酚、高盐溶液与Trizol) | 第19
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· cDNA第一条链的合成 | 第19-20
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· Gene Race法克隆全长基因 | 第20-21
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· Takara公司的pMD-18T载体亚克隆 | 第21
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· 百泰克公司质粒提取试剂盒 | 第21-22
页 |
· 百泰克公司DNA片段的回收 | 第22
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· 粘末端PCR法进行基因克隆 | 第22-23
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· IPTG诱导表达 | 第23
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· 蛋白的提取 | 第23
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· 镍柱纯化目标蛋白 | 第23-24
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· 蛋白浓缩及分子筛纯化 | 第24
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· SDS-PAGE电泳 | 第24
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· 虎杖基因组DNA的提取 | 第24-25
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· 农杆菌感受态细胞的制备: | 第25
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· 农杆菌感受态细胞的转化: | 第25
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· 含目的基因的农杆菌的鉴定 | 第25
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· 根癌农杆菌介导pCAMBIA3301转化烟草 | 第25
页 |
· Trizol法提取烟草RNA | 第25-26
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· 用Promega的DNase处理所提取的RNA | 第26
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· 白藜芦醇的提取 | 第26
页 |
· 色谱分析 | 第26-27
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第三章 结果与分析 | 第27-52
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· 虎杖RS基因全长cDNA的克隆与测序分析 | 第27-34
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· RT-PCR方法克隆虎杖RS基因同源片断 | 第27-28
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· 克隆虎杖RS基因的3’末端: | 第28-29
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· Gene Race方法克隆基因5’末端 | 第29
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· 全长序列 | 第29-32
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· 与来自花生、葡萄、蓼科大黄属的RS基因以及查尔酮查尔酮合酶基因进行蛋白序列比对 | 第32-34
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· 虎杖基因组DNA中白藜芦醇合酶基因同源序列的克隆与分析 | 第34-40
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· 扩增起始密码子与终止密码子之间的序列 | 第34-35
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· 从虎杖基因组DNA中克隆到比全长编码区缺失了72bp的序列 | 第35-38
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· 从虎杖基因组DNA中克隆到了含有全长编码区的序列 | 第38-39
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· 从虎杖基因组DNA中克隆到含有两个内含子的序列 | 第39-40
页 |
· PNRS、PCRS、PCRS11基因的原核表达 | 第40-44
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· 将PNRS、PCRS、PCRS11三个基因克隆到pET22B上 | 第40-43
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· 进行诱导表达、纯化与鉴定 | 第43-44
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· 白藜芦醇合酶基因的植物表达 | 第44-51
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· 利用T载体pMD-18T进行亚克隆 | 第44-45
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· 植物表达载体的构建 | 第45-47
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· 烟草的遗传转化 | 第47-48
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· PCR法检测转基因烟草植株 | 第48-49
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· RT-PCR法检测转基因烟草植株 | 第49-50
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· HPLC法检测转基因烟草中白藜芦醇的含量 | 第50-51
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· 讨论 | 第51-52
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第四章 结论 | 第52-53
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· 基因克隆 | 第52
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· 原核表达 | 第52
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· 植物表达 | 第52-53
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参考文献 | 第53-58
页 |
致谢 | 第58-59
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作者简历 | 第59页 |