论文目录 | |
| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-20页 |
| 1.1 石油污染的来源及危害 | 第11-14页 |
| 1.1.1 石油的组成 | 第11-12页 |
| 1.1.2 石油污染的来源 | 第12页 |
| 1.1.3 石油污染的危害 | 第12-14页 |
| 1.2 石油污染的处理技术 | 第14-15页 |
| 1.2.1 物理法 | 第14页 |
| 1.2.2 化学法 | 第14-15页 |
| 1.2.3 生物法 | 第15页 |
| 1.3 石油烃降解微生物 | 第15-16页 |
| 1.4 石油烃微生物降解的主要方式 | 第16-18页 |
| 1.4.1 链石油烃的生物降解 | 第17页 |
| 1.4.2 环烷烃的生物降解 | 第17页 |
| 1.4.3 芳香烃的生物降解 | 第17-18页 |
| 1.5 影响微生物修复石油污染因素 | 第18-19页 |
| 1.5.1 污染物性质 | 第18页 |
| 1.5.2 微生物种类 | 第18-19页 |
| 1.5.3 环境因素 | 第19页 |
| 1.6 本课题研究目的与意义 | 第19页 |
| 1.7 本论文研究内容 | 第19-20页 |
| 第二章 石油烃降解菌的筛选及鉴定 | 第20-37页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 实验材料 | 第20-23页 |
| 2.2.1 土壤样品 | 第20页 |
| 2.2.2 原油 | 第20-21页 |
| 2.2.3 主要化学试剂 | 第21页 |
| 2.2.4 培养基 | 第21-22页 |
| 2.2.5 仪器与设备 | 第22-23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-31页 |
| 2.3.1 菌株的分离纯化 | 第23-24页 |
| 2.3.2 菌株生长特性研究 | 第24-27页 |
| 2.3.2.1 生长曲线的测定 | 第24页 |
| 2.3.2.2 环境因素对菌体的影响 | 第24-25页 |
| 2.3.2.3 革兰氏染色 | 第25页 |
| 2.3.2.4 生理生化试验鉴定 | 第25-27页 |
| 2.3.3 菌种分子生物学鉴定 | 第27-31页 |
| 2.3.3.1 菌种16S rDNA测序 | 第27-28页 |
| 2.3.3.2 PCR扩增 | 第28页 |
| 2.3.3.3 PCR产物回收 | 第28-29页 |
| 2.3.3.4 PCR产物与T载体连接 | 第29页 |
| 2.3.3.5 感受态细胞的制备 | 第29页 |
| 2.3.3.6 连接产物的转化 | 第29-30页 |
| 2.3.3.7 PCR鉴定 | 第30页 |
| 2.3.3.8 系统发育树的构建 | 第30-31页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第31-36页 |
| 2.4.1 菌株的分离筛选 | 第31页 |
| 2.4.2 菌落特征 | 第31-32页 |
| 2.4.3 菌株在LB培养基中生长曲线 | 第32-33页 |
| 2.4.4 环境因素对菌体的影响 | 第33-34页 |
| 2.4.5 革兰氏染色 | 第34页 |
| 2.4.6 生理生化鉴定结果 | 第34-35页 |
| 2.4.7 16S rDNA测序以及系统发育树的构建 | 第35-36页 |
| 2.5 本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 菌株NDL-5的降解特性分析 | 第37-44页 |
| 3.1 引言 | 第37页 |
| 3.2 实验材料 | 第37-39页 |
| 3.2.1 菌株 | 第37页 |
| 3.2.2 原油 | 第37页 |
| 3.2.3 主要化学试剂 | 第37-38页 |
| 3.2.4 培养基 | 第38页 |
| 3.2.5 仪器与设备 | 第38-39页 |
| 3.3 实验方法 | 第39-40页 |
| 3.3.1 标准油的制备 | 第39页 |
| 3.3.2 气相色谱质谱联用法测定石油烃降解率 | 第39-40页 |
| 3.3.2.1 待测样品预处理 | 第39页 |
| 3.3.2.2 气相色谱质谱联用法分析条件 | 第39页 |
| 3.3.2.3 样品中主要成分降解率的计算方法 | 第39-40页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第40-43页 |
| 3.4.1 标准油主要成分 | 第40-41页 |
| 3.4.2 石油菌降解特性分析 | 第41-43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-44页 |
| 第四章 菌株NDL-5对萘的降解特性分析及海水模拟修复试验 | 第44-52页 |
| 4.1 前言 | 第44页 |
| 4.2 实验材料 | 第44-46页 |
| 4.2.1 菌株 | 第44页 |
| 4.2.2 主要化学试剂 | 第44-45页 |
| 4.2.3 培养基 | 第45页 |
| 4.2.4 仪器与设备 | 第45-46页 |
| 4.3 实验方法 | 第46-48页 |
| 4.3.1 菌株对萘的降解特性分析 | 第46-47页 |
| 4.3.1.1 萘降解菌的筛选 | 第46页 |
| 4.3.1.2 生长曲线测定 | 第46页 |
| 4.3.1.3 标准曲线的绘制 | 第46页 |
| 4.3.1.4 萘降解率测定 | 第46-47页 |
| 4.3.2 菌株在原油污染的人工海水中的初步应用 | 第47-48页 |
| 4.3.2.1 人工海水的配置 | 第47页 |
| 4.3.2.2 添加氮磷营养对人工海水动态模拟生物修复效果的影响 | 第47页 |
| 4.3.2.3 接种量对人工海水动态模拟生物修复效果的影响 | 第47页 |
| 4.3.2.4 气相色谱质谱联用法测定石油烃降解率 | 第47-48页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第48-51页 |
| 4.4.1 菌株对萘的降解特性分析结果 | 第48-50页 |
| 4.4.1.1 萘降解菌的筛选 | 第48页 |
| 4.4.1.2 菌株NDL-5在萘培养基中的生长曲线 | 第48-49页 |
| 4.4.1.3 菌株NDL-5对萘降解率的测定 | 第49-50页 |
| 4.4.2 菌株在原油污染的人工海水中应用的试验结果与分析 | 第50-51页 |
| 4.4.2.1 氮磷营养对生物修复效果的影响 | 第50页 |
| 4.4.2.2 接种量对生物修复效果的影响 | 第50-51页 |
| 4.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 结论 | 第52-53页 |
| 参考文献 | 第53-57页 |
| 致谢 | 第57页 |
