论文目录 | |
| 摘要 | 第1-4页 |
| abstract | 第4-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-34页 |
| 1.1 功能化纳米粒子的制备及其应用 | 第10-18页 |
| 1.1.1 金银纳米粒子的制备及其DNA的功能化 | 第10-11页 |
| 1.1.2 金银纳米粒子在生物传感器中的应用 | 第11-18页 |
| 1.1.2.1 金银纳米粒子在比色传感器中的应用 | 第11-12页 |
| 1.1.2.2 金银纳米粒子在电化学传感器中的应用 | 第12-13页 |
| 1.1.2.3 金银纳米粒子在表面增强拉曼传感器中的应用 | 第13-15页 |
| 1.1.2.4 金银纳米粒子在荧光传感器中的应用 | 第15-18页 |
| 1.2 聚集诱导发光效应的机理与应用 | 第18-25页 |
| 1.2.1 AIE分子的发光机理 | 第18-19页 |
| 1.2.2 AIE效应的应用 | 第19-25页 |
| 1.2.2.1 AIE效应在生物传感领域的应用 | 第19-22页 |
| 1.2.2.2 AIE效应在化学传感领域的应用 | 第22-24页 |
| 1.2.2.3 AIE效应在生物成像中的应用 | 第24-25页 |
| 1.3 核酸扩增策略及其在生物传感中的应用 | 第25-32页 |
| 1.3.1 核酸扩增策略 | 第25-27页 |
| 1.3.1.1 酶辅助的核酸扩增 | 第26页 |
| 1.3.1.2 免酶核酸扩增 | 第26-27页 |
| 1.3.2 核酸扩增策略在生物传感中的应用 | 第27-32页 |
| 1.3.2.1 酶辅助的核酸扩增在生物传感中的应用 | 第27-29页 |
| 1.3.2.2 免酶核酸扩增在生物传感中的应用 | 第29-32页 |
| 1.4 立题依据及主要研究内容 | 第32-34页 |
| 第二章 基于金属荧光增强效应检测ATP的研究 | 第34-46页 |
| 2.1 前言 | 第34页 |
| 2.2 实验部分 | 第34-37页 |
| 2.2.1 仪器与试剂 | 第34-35页 |
| 2.2.2 实验步骤 | 第35-37页 |
| 2.2.2.1 溶液的配制和DNA的预处理 | 第35-36页 |
| 2.2.2.2 纳米粒子的制备 | 第36页 |
| 2.2.2.3 DNA修饰纳米粒子 | 第36页 |
| 2.2.2.4 荧光检测ATP | 第36-37页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第37-45页 |
| 2.3.1 实验原理 | 第37页 |
| 2.3.2 纳米粒子的表征 | 第37-39页 |
| 2.3.3 实验方案的可行性验证 | 第39-40页 |
| 2.3.4 实验条件的优化 | 第40-42页 |
| 2.3.4.1 ATP的反应时间对实验的影响 | 第40页 |
| 2.3.4.2 ATP的反应温度对实验的影响 | 第40-41页 |
| 2.3.4.3 DNA适体链的长度对实验的影响 | 第41-42页 |
| 2.3.4.4 含猝灭基团的互补链的长度对实验的影响 | 第42页 |
| 2.3.5 银纳米粒子荧光增强体系的优越性 | 第42-43页 |
| 2.3.6 实验的线性范围与检测限 | 第43-44页 |
| 2.3.7 选择性实验 | 第44页 |
| 2.3.8 实际样品中ATP的检测 | 第44-45页 |
| 2.4 小结 | 第45-46页 |
| 第三章 基于滚环复制及杂交链式反应荧光检测DNA的研究 | 第46-58页 |
| 3.1 前言 | 第46页 |
| 3.2 实验部分 | 第46-49页 |
| 3.2.1 仪器与试剂 | 第46-47页 |
| 3.2.2 实验步骤 | 第47-49页 |
| 3.2.2.1 溶液的配制与DNA预处理 | 第47页 |
| 3.2.2.2 滚环复制放大的步骤 | 第47-48页 |
| 3.2.2.3 杂交链式反应放大的步骤 | 第48页 |
| 3.2.2.4 荧光信号的检测 | 第48页 |
| 3.2.2.5 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第48-49页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第49-57页 |
| 3.3.1 实验原理 | 第49-50页 |
| 3.3.2 实验的可行性验证 | 第50-51页 |
| 3.3.3 实验条件的优化 | 第51-54页 |
| 3.3.3.1 T4连接酶的用量对实验的影响 | 第51-52页 |
| 3.3.3.2 Phi29DNA聚合酶用量对实验的影响 | 第52页 |
| 3.3.3.3 剪切酶Nb.BsmI用量对实验的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.3.4 滚环复制反应时间对实验的影响 | 第53页 |
| 3.3.3.5 杂交链式反应时间对实验的影响 | 第53-54页 |
| 3.3.3.6 缓冲溶液的pH对实验的影响 | 第54页 |
| 3.3.4 实验的线性范围与检测限 | 第54-56页 |
| 3.3.5 选择性实验 | 第56-57页 |
| 3.4 小结 | 第57-58页 |
| 第四章 基于酶切循环放大和聚集诱导发光效应检测Hg~(2+) | 第58-70页 |
| 4.1 引言 | 第58页 |
| 4.2 实验部分 | 第58-61页 |
| 4.2.1 仪器与试剂 | 第58-59页 |
| 4.2.2 实验步骤 | 第59-61页 |
| 4.2.2.1 溶液的配制与DNA预处理 | 第59页 |
| 4.2.2.2 TPE-N_3的合成 | 第59-60页 |
| 4.2.2.3 通过click反应合成TPE-DNA | 第60页 |
| 4.2.2.4 酶切循环放大反应 | 第60-61页 |
| 4.2.2.5 Hg~(2+)的荧光检测 | 第61页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第61-69页 |
| 4.3.1 TPE-N3基于三螺旋结构荧光增强的原理 | 第61页 |
| 4.3.2 TPE-N3的表征 | 第61-63页 |
| 4.3.3 TPE-N3连接DNA的荧光表征 | 第63页 |
| 4.3.4 TPE-N3基于三螺旋结构荧光增强的可行性验证 | 第63-64页 |
| 4.3.5 实验条件的优化 | 第64-65页 |
| 4.3.5.1 Ag+的浓度对三螺旋结构的影响 | 第64-65页 |
| 4.3.5.2 精胺的浓度对三螺旋结构的影响 | 第65页 |
| 4.3.6 基于酶切放大反应和聚集诱导发光效应检测Hg~(2+)的原理 | 第65-66页 |
| 4.3.7 基于酶切放大反应和聚集诱导发光效应检测Hg~(2+)的可行性验证 | 第66-67页 |
| 4.3.8 核酸外切酶(Exo III)的用量对实验的影响 | 第67页 |
| 4.3.9 实验的线性范围与检测限 | 第67-68页 |
| 4.3.10 实验方案的选择性研究 | 第68-69页 |
| 4.4 小结 | 第69-70页 |
| 结论 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第79-80页 |
