论文目录 | |
| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-11页 |
| 第一部分 文献综述 | 第11-18页 |
| 1 有氧运动对衰老影响的概述 | 第11-15页 |
| 1.1 衰老的定义及生物学特征 | 第11-12页 |
| 1.2 衰老的机制 | 第12-13页 |
| 1.3 自由基概述 | 第13-14页 |
| 1.4 机体的抗氧化防御系统 | 第14页 |
| 1.5 运动对自由基代谢的影响 | 第14-15页 |
| 2 学习记忆概述 | 第15-18页 |
| 2.1 学习记忆的概念 | 第15页 |
| 2.2 学习记忆的分类 | 第15-16页 |
| 2.3 额叶与学习记忆的关系 | 第16页 |
| 2.4 学习记忆的神经生物学机制 | 第16-18页 |
| 第二部分 实验研究 | 第18-50页 |
| 1 前言 | 第18-19页 |
| 2 实验材料与方法 | 第19-27页 |
| 2.1 实验对象 | 第19页 |
| 2.2 实验材料 | 第19页 |
| 2.2.1 训练设备 | 第19页 |
| 2.2.2 实验器材 | 第19页 |
| 2.2.3 实验试剂 | 第19页 |
| 2.3 实验方法及步骤 | 第19-20页 |
| 2.3.1 动物造模 | 第19-20页 |
| 2.3.2 造模及运动处理 | 第20页 |
| 2.3.3 D-半乳糖致衰老造模 | 第20页 |
| 2.4 Morris水迷宫行为学观测 | 第20-21页 |
| 2.4.1 定位航行实验 | 第20-21页 |
| 2.4.2 空间探索实验 | 第21页 |
| 2.5 取材及样本处理 | 第21页 |
| 2.6 测定大鼠大脑内自由基MDA含量、SOD、GSH-PX活性 | 第21页 |
| 2.7 Real-time PCR检测额叶GAP-43 的mRNA基因表达 | 第21-24页 |
| 2.7.1 提取额叶RNA | 第21-22页 |
| 2.7.2 RNA完整性和纯度鉴定 | 第22页 |
| 2.7.3 RT-PCR检测GAP-43 mRAN表达 | 第22-23页 |
| 2.7.4 第一链cDNA的PCR扩增 | 第23-24页 |
| 2.7.5 结果处理 | 第24页 |
| 2.8 检测额叶GAP-43 蛋白表达 | 第24-26页 |
| 2.8.1 组织中总蛋白的提取 | 第24-25页 |
| 2.8.2 GAP-43 蛋白含量的测定 | 第25页 |
| 2.8.3 SDS-PAGB电泳 | 第25-26页 |
| 2.8.4 蛋白质转印 | 第26页 |
| 2.8.5 免疫反应 | 第26页 |
| 2.8.6 内参免疫印迹 | 第26页 |
| 2.8.7 灰度值分析 | 第26页 |
| 2.9 免疫组化检测额叶GAP-43 表达 | 第26-27页 |
| 2.10 数据处理 | 第27页 |
| 3 实验结果 | 第27-37页 |
| 3.1 形态学观测 | 第27页 |
| 3.2 自由基检测结果 | 第27-30页 |
| 3.2.1 大鼠大脑皮质MDA检测结果 | 第27-28页 |
| 3.2.2 大鼠大脑皮质SOD检测结果 | 第28-29页 |
| 3.2.3 大鼠大脑皮质GSH-Px检测结果 | 第29-30页 |
| 3.3 Morris水迷宫行为学测试结果 | 第30-33页 |
| 3.3.1 定位航行实验数据分析 | 第30-32页 |
| 3.3.2 空间探索实验数据分析 | 第32-33页 |
| 3.4 Real-time PCR检测额叶Gap-43 m RNA表达量 | 第33-34页 |
| 3.5 Western-bolting检测额叶Gap-43 蛋白表达量 | 第34-35页 |
| 3.6 免疫组化检测额叶Gap-43 蛋白表达 | 第35-37页 |
| 3.6.1 额叶Gap-43 蛋白表达免疫组化形态观测 | 第35-36页 |
| 3.6.2 额叶Gap-43 蛋白表达免疫组化染色结果 | 第36-37页 |
| 4 讨论与分析 | 第37-43页 |
| 4.1 大鼠衰老造模型验证 | 第37-39页 |
| 4.2 不同时期的有氧运动对大鼠脑衰老的影响 | 第39-40页 |
| 4.3 不同时期的有氧运动对大鼠空间学习记忆能力的影响 | 第40-42页 |
| 4.4 不同时期的有氧运动对大鼠额叶GAP-43 表达的影响 | 第42-43页 |
| 5 结论 | 第43页 |
| 6 参考文献 | 第43-50页 |
| 致谢 | 第50-51页 |
| 在读期间发表的学术论文 | 第51页 |
